Preview

Сибирский онкологический журнал

Расширенный поиск

БЕЛКИ КЛЕТОЧНОЙ ПОДВИЖНОСТИ В КАРЦИНОМЕ ЭНДОМЕТРИЯ И ЭНДОМЕТРИАЛЬНОЙ ГИПЕРПЛАЗИИ: СВЯЗЬ С РИСКОМ РАЗВИТИЯ РАКА

https://doi.org/10.21294/1814-4861-2020-19-5-51-60

Полный текст:

Аннотация

Введение. Известно, что белки, связанные с клеточной подвижностью, играют важную роль в инвазии и метастазировании злокачественных опухолей, тем не менее нет данных об их связи с развитием новообразований, в том числе рака эндометрия (РЭ).

Целью исследования было изучение уровня актин-связывающих белков, p45-Ser-β-катенина и активности кальпаинов при гиперплазии эндометрия и при РЭ.

Материал и методы. Общая активность кальпаинов, уровни p45-Ser β-катенина, Arp3, гельзолина, кофиллина и тимозина β-4 были оценены у 43 больных раком эндометрия I–II стадии в постменопаузе и у 40 пациенток с гиперплазией эндометрия. Проточную цитометрию и вестерн-блоттинг использовали для определения экспрессии p45 Ser β-катенина и актин-связывающих белков. Общая активность кальпаинов оценивалась флуориметрическим методом.

Результаты. Уровни кофилина-1, тимозина β-4 и активность кальпаинов были выше в тканях злокачественных опухолей, чем при гиперплазии эндометрия. Уровни кофилина-1 и тимозина β-4 были связаны с глубиной инвазии рака эндометрия в миометрий. Содержание тимозина β-4 коррелировало с наличием инвазии опухоли в шейку матки. Выявленные корреляции между актин-связывающими белками, р45-Ser-β-катенином и общей активностью кальпаинов в ткани гиперплазии эндометрия, но не в ткани рака свидетельствуют об участии этих протеаз в регуляции клеточной миграции при гиперплазии эндометрия. Уровни тимозина-4, кофилина и общая активность кальпаинов являются независимыми факторами риска развития рака у пациентов с гиперплазией эндометрия.

Заключение. Уровень актин-связывающих белков, а также общая активность кальпаинов были повышены в тканях карциномы эндометрия по сравнению с гиперплазией эндометрия. Уровни тимозина-4, кофилина и общая активность кальпаинов в тканях гиперплазии эндометрия могут быть независимыми факторами риска развития рака. 

Об авторах

Н. В. Юнусова
Научно-исследовательский институт онкологии, Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук; ФГБОУ ВО «Сибирский государственный медицинский университет» Минздрава РФ
Россия

доктор медицинских наук, ведущий научный сотрудник,

634009, г. Томск, пер. Кооперативный, 5;

634050, г. Томск, Московский тракт, 2



Л. В. Спирина
Научно-исследовательский институт онкологии, Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук; ФГБОУ ВО «Сибирский государственный медицинский университет» Минздрава РФ
Россия

доктор медицинских наук, ведущий научный сотрудник,

634009, г. Томск, пер. Кооперативный, 5;

634050, г. Томск, Московский тракт, 2



А. Л. Чернышова
Научно-исследовательский институт онкологии, Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

доктор медицинских наук, ведущий научный сотрудник,

634009, г. Томск, пер. Кооперативный, 5



Е. С. Колегова
Научно-исследовательский институт онкологии, Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

кандидат медицинских наук, научный сотрудник,

634009, г. Томск, пер. Кооперативный, 5



Е. А. Сиденко
Научно-исследовательский институт онкологии, Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

аспирант, 

634009, г. Томск, пер. Кооперативный, 5



Л. А. Коломиец
Научно-исследовательский институт онкологии, Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук; ФГБОУ ВО «Сибирский государственный медицинский университет» Минздрава РФ
Россия

доктор медицинских наук, профессор, заведующая отделением онкогинекологии, 

634009, г. Томск, пер. Кооперативный, 5;

634050, г. Томск, Московский тракт, 2



И. В. Кондакова
Научно-исследовательский институт онкологии, Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук
Россия

доктор медицинских наук, профессор, заведующая лабораторией биохимии опухолей, 

634009, г. Томск, пер. Кооперативный, 5



Список литературы

1. Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2018. CA Cancer J Clin. 2018 Jan; 68(1): 7–30. doi: 10.3322/caac.21442.

2. Felix A.S., Yang H.P., Bell D.W., Sherman M.E. Epidemiology of Endometrial Carcinoma: Etiologic Importance of Hormonal and Metabolic Influences. Adv Exp Med Biol. 2017; 943: 3–46. doi: 10.1007/978-3-319-43139-0_1.

3. Kamal A., Tempest N., Parkes C., Alnafakh R., Makrydima S., Adishesh M., Hapangama D.K. Hormones and endometrial carcinogenesis. Horm Mol Biol Clin Investig. 2016 Feb; 25(2): 129–48. doi: 10.1515/hmbci-2016-0005.

4. Spirina L.V., Bochkareva N.V., Kondakova I.V., Kolomiets L.A., Shashova E.E., Koval’ V.D., Chernysheva A.L., Asadchikova O.N. Regulation of insulin-like growth factors and NF-kappaB by proteasome system in endometrial cancer. Mol Biol (Mosk). 2012 May-Jun; 46(3): 452–60.

5. Gawron I., Łoboda M., Babczyk D., Ludwin I., Basta P., Pityński K., Ludwin A. Endometrial cancer and hyperplasia rate in women before menopause with abnormal uterine bleeding undergoing endometrial sampling. Przegl Lek. 2017; 74(4): 139–43.

6. Chen M., Jin Y., Li Y., Bi Y., Shan Y., Pan L. Oncologic and reproductive outcomes after fertility-sparing management with oral progestin for women with complex endometrial hyperplasia and endometrial cancer. Int J Gynaecol Obstet. 2016 Jan; 132(1): 34–8. doi: 10.1016/j.ijgo.2015.06.046.

7. Markowska A., Pawałowska M., Lubin J., Markowska J. Signalling pathways in endometrial cancer. Contemp Oncol (Pozn). 2014; 18(3): 143–8. doi: 10.5114/wo.2014.43154.

8. Zhang X.H., Li M., Kang Y.J., Xie Y.Q., Cao Y.X. Long non-coding RNA LINP1 functions as an oncogene in endometrial cancer progression by regulating the PI3K/AKT signaling pathway. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2019 Aug; 23(16): 6830–6838. doi: 10.26355/eurrev_201908_18722.

9. Kondakova I.V., Spirina L.V., Shashova E.E., Koval’ V.D., Kolomiets L.A., Chernysheva A.L., Slonimskaia E.M. Proteasome activity in tumors of female reproductive system. Bioorg Khim. 2012 Jan-Feb; 38(1): 106–10. doi: 10.1134/s106816201201013x.

10. Kondakova I.V., Spirina L.V., Koval V.D., Shashova E.E., Choinzonov E.L., Ivanova E.V., Kolomiets L.A., Chernyshova A.L., Slonimskaya E.M., Usynin E.A., Afanas’ev S.G. Chymotrypsin-like activity and subunit composition of proteasomes in human cancers. Molecular Biology. 2014; 48(3): 384–389. doi: 10.1134/S002689331403011X.

11. Nesina I.P., Iurchenko N.P., Buchynska L.G. Markers of the epithelial-mesenchymal transition in cells of endometrial carcinoma. Exp Oncol. 2018 Oct; 40(3): 218–222.

12. dos Remedios C.G., Chhabra D., Kekic M., Dedova I.V., Tsubakihara M., Berry D.A., Nosworthy N.J. Actin binding proteins: regulation of cytoskeletal microfilaments. Physiol Rev. 2003 Apr; 83(2): 433–73. doi: 10.1152/physrev.00026.2002.

13. Huang H.C., Hu C.H., Tang M.C., Wang W.S., Chen P.M., Su Y. Thymosin beta4 triggers an epithelial-mesenchymal transition in colorectal carcinoma by upregulating integrin-linked kinase. Oncogene. 2007 Apr 26; 26(19): 2781–90. doi: 10.1038/sj.onc.1210078.

14. Maimaiti Y., Tan J., Liu Z., Guo Y., Yan Y., Nie X., Huang B., Zhou J., Huang T. Overexpression of cofilin correlates with poor survival in breast cancer: A tissue microarray analysis. Oncol Lett. 2017 Aug; 14(2): 2288–2294. doi: 10.3892/ol.2017.6413.

15. Baczynska D., Bombik I., Malicka-Błaszkiewicz M. β-Catenin Expression Regulates Cell Migration of Human Colonic Adenocarcinoma Cells Through Gelsolin. Anticancer Res. 2016; 36(10): 5249–56. doi: 10.21873/anticanres.11095.

16. Kazazian K., Go C., Wu H., Brashavitskaya O., Xu R., Dennis J.W., Gingras A.C., Swallow C.J. Plk4 Promotes Cancer Invasion and Metastasis through Arp2/3 Complex Regulation of the Actin Cytoskeleton. Cancer Res. 2017 Jan 15; 77(2): 434–447. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-16-2060.

17. Bowser J.L., Blackburn M.R., Shipley G.L., Molina J.G., Dunner K.Jr., Broaddus R.R. Loss of CD73-mediated actin polymerization promotes endometrial tumor progression. J Clin Invest. 2016 Jan; 126(1): 220–38. doi: 10.1172/JCI79380.

18. Kiewisz J., Wasniewski T., Kmiec Z. Participation of WNT and β-Catenin in Physiological and Pathological Endometrial Changes: Association with Angiogenesis. Biomed Res Int. 2015; 2015: 854056. doi: 10.1155/2015/854056.

19. Chan D.W., Mak C.S., Leung T.H., Chan K.K., Ngan H.Y. Downregulation of Sox7 is associated with aberrant activation of Wnt/b-catenin signaling in endometrial cancer. Oncotarget. 2012 Dec; 3(12): 1546–56. doi: 10.18632/oncotarget.667.

20. Wang E., Wang D., Li B., Ma H., Wang C., Guan L., Zhang H., Yi L., Li S. Capn4 promotes epithelial-mesenchymal transition in human melanoma cells through activation of the Wnt/β-catenin pathway. Oncol Rep. 2017 Jan; 37(1): 379–387. doi: 10.3892/or.2016.5247.

21. Bravo-Cordero J.J., Cordani M., Soriano S.F., Díez B., Muñoz-Agudo C., Casanova-Acebes M., Boullosa C., Guadamillas M.C., Ezkurdia I., González-Pisano D., Del Pozo M.A., Montoya M.C. A novel high-content analysis tool reveals Rab8-driven cytoskeletal reorganization through Rho GTPases, calpain and MT1-MMP. J Cell Sci. 2016 Apr 15; 129(8): 1734–49. doi: 10.1242/jcs.174920.

22. Xu C., Yu X., Zhu Y., Cai Z., Yu L., Lin Y., Yu H., Xue Z., Zhou L. Overexpression of calpain 1 predicts poor outcome in patients with colorectal cancer and promotes tumor cell progression associated with downregulation of FLNA. Oncol Rep. 2019 Jun; 41(6): 3424–3434. doi: 10.3892/or.2019.7121.

23. Ivanova E.V., Kondakova I.V., Spirina L.V., Afanas’ev S.G., Avgustinovich A.V., Cheremisina O.V. Chymotrypsin-like activity of proteasomes and total calpain activity in gastric and colorectal cancer. Bull Exp Biol Med. 2014 Oct; 157(6): 781–4. doi: 10.1007/s10517-014-2666-y.

24. Kondakova I.V., Iunusova N.V., Spirina L.V., Kolomiets L.A., Villert A.B. Association of intracellular proteinase activities with the content of locomotor proteins in tissues of primary tumors and metastasis in ovarian cancer. Bioorg Khim. 2014 Nov-Dec; 40(6): 735–42. doi: 10.1134/s1068162014060089.

25. Salehin D., Fromberg I., Haugk C., Dohmen B., Georg T., Bohle R.M., Bauerschlag D., Maass N., Friedrich M. Immunhistochemical analysis for expression of calpain 1, calpain 2 and calpastatin in endometrial cancer. Anticancer Res. 2010 Jul; 30(7): 2837–43.

26. Sandmann S., Prenzel F., Shaw L., Schauer R., Unger T. Activity profile of calpains I and II in chronically infarcted rat myocardium-- influence of the calpain inhibitor CAL 9961. Br J Pharmacol. 2002 Apr; 135(8): 1951–8. doi: 10.1038/sj.bjp.0704661.

27. Zhou J., Wang Y., Fei J., Zhang W. Expression of cofilin 1 is positively correlated with the differentiation of human epithelial ovarian cancer. Oncol Lett. 2012 Dec; 4(6): 1187–1190. doi: 10.3892/ol.2012.897.

28. Gun B.D., Bahadir B., Bektas S., Barut F., Yurdakan G., Kandemir N.O., Ozdamar S.O. Clinicopathological significance of fascin and CD44v6 expression in endometrioid carcinoma. Diagn Pathol. 2012 Jul 11; 7: 80. doi: 10.1186/1746-1596-7-80.

29. Nishimura S., Tsuda H., Kataoka F., Arao T., Nomura H., Chiyoda T., Susumu N., Nishio K., Aoki D. Overexpression of cofilin 1 can predict progression-free survival in patients with epithelial ovarian cancer receiving standard therapy. Hum Pathol. 2011 Apr; 42(4): 2012‒21. doi: 10.1016/j.humpath.2010.07.019.

30. Ji P., Diederichs S., Wang W., Böing S., Metzger R., Schneider P.M., Tidow N., Brandt B., Buerger H., Bulk E., Thomas M., Berdel W.E., Serve H., Müller-Tidow C. MALAT-1, a novel noncoding RNA, and thymosin beta4 predict metastasis and survival in early-stage non-small cell lung cancer. Oncogene. 2003 Sep 11; 22(39): 8031–41. doi: 10.1038/sj.onc.1206928.

31. Noske A., Denkert C., Schober H., Sers C., Zhumabayeva B., Weichert W., Dietel M., Wiechen K. Loss of Gelsolin expression in human ovarian carcinomas. Eur J Cancer. 2005; 41(3): 461–9. doi: 10.1016/j.ejca.2004.10.025.

32. Zheng H.C., Zheng Y.S., Li X.H., Takahashi H., Hara T., Masuda S., Yang X.H., Guan Y.F., Takano Y. Arp2/3 overexpression contributed to pathogenesis, growth and invasion of gastric carcinoma. Anticancer Res. 2008 Jul-Aug; 28(4B): 2225–32.

33. Yoon Y.J., Han Y.M., Choi J., Lee Y.J., Yun J., Lee S.K., Lee C.W., Kang J.S., Chi S.W., Moon J.H., Lee S., Han D.C., Kwon B.M. Benproperine, an ARPC2 inhibitor, suppresses cancer cell migration and tumor metastasis. Biochem Pharmacol. 2019 May; 163: 46–59. doi: 10.1016/j.bcp.2019.01.017.

34. Spirina L.V., Yunusova N.V., Kondakova I.V., Kolomiets L.A., Koval V.D., Chernyshova A.L., Shpileva O.V. Association of growth factors, HIF-1 and NF-κB expression with proteasomes in endometrial cancer. Mol Biol Rep. 2012 Sep; 39(9): 8655–62. doi: 10.1007/s11033-012-1720-y.


Для цитирования:


Юнусова Н.В., Спирина Л.В., Чернышова А.Л., Колегова Е.С., Сиденко Е.А., Коломиец Л.А., Кондакова И.В. БЕЛКИ КЛЕТОЧНОЙ ПОДВИЖНОСТИ В КАРЦИНОМЕ ЭНДОМЕТРИЯ И ЭНДОМЕТРИАЛЬНОЙ ГИПЕРПЛАЗИИ: СВЯЗЬ С РИСКОМ РАЗВИТИЯ РАКА. Сибирский онкологический журнал. 2020;19(5):51-60. https://doi.org/10.21294/1814-4861-2020-19-5-51-60

For citation:


Yunusova N.V., Spirina L.V., Chernyshova A.L., Kolegova E.S., Sidenko E.A., Kolomiets L.A., Kondakova I.V. CELL MOTILITY PROTEINS IN ENDOMETRIUM CARCINOMA AND ENDOMETRIAL HYPERPLASIA: ASSOCIATION WITH CANCER RISK. Siberian journal of oncology. 2020;19(5):51-60. https://doi.org/10.21294/1814-4861-2020-19-5-51-60

Просмотров: 77


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1814-4861 (Print)
ISSN 2312-3168 (Online)