Антитела класса G, специфичные к бензо[а]пирену, эстрадиолу и прогестерону у женщин с колоректальным раком и раком молочной железы

Цель исследования ‒ определение уровня антител класса G, специфичных к бензо[а]пирену (IgG-Bp), эстрадиолу (IgG-Es) и прогестерону (IgG-Pg) у больных колоректальным раком и раком молочной железы. Материал и методы. С помощью неконкурентного иммуноферментного анализа исследовали содержание этих антител в сыворотке крови здоровых женщин (n=401), больных колоректальным раком (n=219) и раком молочной железы (n=1469). Статистический анализ результатов проводили с помощью программы Statistica 8.0. Результаты. У больных колоректальным раком по сравнению со здоровыми лицами чаще встречались высокие значения IgG-Bp >7 (66 % vs 25 %, p<0,0001, OR=5,9) и IgG-Es >6 (58 % vs 45 %, p=0,002, OR=1,7), а также индивидуальные соотношения антител: IgG-Bp / IgG-Es >1 (74 % vs в 34 %, p<0,0001, OR=5,6); IgG-Bp / IgG-Pg >1,5 (75 % vs 28 %, p<0,0001, OR=7,8); IgG-Es / IgG-Pg >1,5 (58 % vs 38 %, p<0,0001, OR=2,3). У больных раком молочной железы по сравнению со здоровыми лицами чаще встречались высокие значения IgG-Bp >6 (57 % vs 33 %, p<0,0001, oR=2,7) IgG-Es >5 (62 % vs 53 %, p=0,003, OR=1,4), а также соотношения IgG-Bp/ IgG-Es >1 (55 % vs 34 %, p<0,0001, OR=2,4), IgG-Bp / IgG-Pg >1,3 (71 % vs 36 %, p<0,0001, OR=4,5) и IgG-Es / IgG-Pg >1,4 (62 % vs 44 %, p<0,0001, OR=2,1). У больных колоректальным раком по сравнению с больными раком молочной железы чаще встречались высокие значения IgG-Bp >7 (66 % vs 50 %, p<0,0001), а также соотношения IgG-Bp / IgG-Es >1 (74 % vs 55 %, p<0,0001) и IgG-Bp IgG-Pg >1,5 (76 % vs 60 %, p<0,0001). Заключение. Иммуноанализ IgG-Bp, IgG-Es и IgG-Pg можно использовать для создания диагностических тест-систем колоректального рака и рака молочной железы.

1. Злокачественные новообразования в России в 2019 году (заболеваемость и смертность). Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, А.О. Шахзадовой. М., 2020. 214 с.

2. Худолей В.В. Канцерогены: характеристики, закономерности, механизмы действия. СПб., 1990, 419 с.

3. Gunter M.J., Divi R.L., Kulldorff M., Vermeulen R., Haverkos K.J., Kuo M.M., Strickland P., Poirier M.C., Rothman N., Sinha R. Leukocyte polycyclic aromatic hydrocarbon-DNA adduct formation and colorectal adenoma. Carcinogenesis. 2007; 28(7): 1426–9. doi: 10.1093/carcin/bgm022.

4. Jamin E.L., Riu A., Douki T., Debrauwer L., Cravedi J.P., Zalko D., Audebert M. Combined genotoxic effects of a polycyclic aromatic hydrocarbon (B(a)P) and an heterocyclic amine (PhIP) in relation to colorectal carcinogenesis. PLoS One. 2013; 8(3). doi: 10.1371/journal.pone.0058591.

5. Harris D.L., Washington M.K., Hood D.B., Roberts L.J., Ramesh A. Dietary fat-influenced development of colon neoplasia in Apc Min mice exposed to benzo(a)pyrene. Toxicol Pathol. 2009; 37(7): 938–46. doi: 10.1177/0192623309351722.

6. Agudo A., Peluso M., Munnia A., Luján-Barroso L., Barricarte A., Amiano P., Navarro C., Sánchez M.J., Quirós J.R., Ardanaz E., Larrañaga N., Tormo M.J., Chirlaque M.D., Rodríguez-Barranco M., SánchezCantalejo E., Cellai F., Bonet C., Sala N., González C.A. Aromatic DNA adducts and breast cancer risk: a case-cohort study within the EPIC-Spain. Carcinogenesis. 2017; 38(7): 691–8. doi: 10.1093/carcin/bgx047.

7. Santen R.J., Yue W., Wang J.P. Estrogen metabolites and breast cancer. Steroids. 2015; 99(Pt A): 61–6. doi: 10.1016/j.steroids.2014.08.003.

8. Yu F.L. 17Beta-estradiol epoxidation as the molecular basis for breast cancer initiation and prevention. Asia Pac J Clin Nutr. 2002; 11(7): 460–6. doi: 10.1046/j.1440-6047.11.s.7.4.x.

9. Глушков А.Н., Поленок Е.Г., Гордеева Л.А., Мун С.А., Костянко М.В., Антонов А.В., Титов В.А., Вержбицкая Н.Е., Вафин И.А. Иммунологический дисбаланс при раке молочной железы и раке легкого у женщин в постменопаузе. Медицинская иммунология. 2018; 20(6): 927–34. doi: 10.15789/1563-0625-2018-6-927-934.

10. Глушков А.Н., Поленок Е.Г., Мун С.А., Гордеева Л.А., Костянко М.В., Луценко В.А., Колпинский Г.И., Брежнева Е.В., Вафин И.А. Индивидуальный иммунологический фенотип и гормональный баланс у женщин в постменопаузе. Российский иммунологический журнал. 2020; 23(1): 61–8. doi: 10.15789/1028-7221-007-IPA.

11. Hajian-Tilaki K. Receiver Operating Characteristic (ROC) Curve Analysis for Medical Diagnostic Test Evaluation. Caspian J Intern Med. 2013; 4(2): 627–35.

12. De Buck S.S., Augustijns P., Muller C.P. Specific antibody modulates absorptive transport and metabolic activation of benzo[a]pyrene across Caco-2 monolayers. J Pharmacol Exp Ther. 2005; 313(2): 640–6. doi: 10.1124/jpet.104.081034.

13. Glushkov A.N., Polenok E.G., Mun S.A., Gordeeva L.A. Inversion of natural immuno-hormonal interactions under influence of antibodies against environmental chemical carcinogens. Med Hypotheses. 2020; 144. doi: 10.1016/j.mehy.2020.109981.

14. Rawlings N.C., Kennedy S.W., Henricks D.M. The active immunization of the cyclic ewe against an estrone protein conjugate. Theriogenology. 1979; 12(3): 139–51. doi: 10.1016/0093-691x(79)90080-3.

15. Hogan A.M., Collins D., Baird A.W., Winter D.C. Estrogen and gastrointestinal malignancy. Mol Cell Endocrinol. 2009; 307(1-2): 19–24. doi: 10.1016/j.mce.2009.03.016.

16. Sasso C.V., Santiano F.E., Campo Verde Arboccó F., Zyla L.E., Semino S.N., Guerrero-Gimenez M.E., Pistone Creydt V., López Fontana C.M., Carón R.W. Estradiol and progesterone regulate proliferation and apoptosis in colon cancer. Endocr Connect. 2019; 8(3): 217–29. doi: 10.1530/EC-18-0374.