Молекулярные особенности прогрессирования рака шейки матки I-II стадии
https://doi.org/10.21294/1814-4861-2026-25-3-48-56
Аннотация
Введение. Эффективность лечения рака шейки матки (РШМ) I–II стадии остается недостаточно высокой из-за риска прогрессирования заболевания, что затрудняет выбор оптимальной тактики лечения и обусловливает необходимость поиска прогностических маркеров.
Цель исследования – выявление особенностей и маркеров прогрессирования РШМ I–II стадии.
Материал и методы. Проведены анализ клинико-морфологических характеристик и полнотранскриптомное секвенирование; валидация результатов выполнена с использованием общедоступных данных из базы Атласа генома рака.
Результаты. У больных с прогрессированием РШМ выявлена активация онкогенных (TNF-α через NFκВ, PI3K/AKT/mTOR и MTORC1, KRAS), метаболических (окислительное фосфорилирование, гликолиз и гипоксия) и иммунных (TGF-β, ответ на INFγ , INFα и IL2/STAT5) сигнальных путей, а также сигналинга фазы G2/М клеточного цикла посредством регуляции активности мишеней транскрипционных факторов E2F и MYC. Выявлено повышение экспрессии гена ITGA6 в опухолях пациенток с прогрессированием заболевания по сравнению со случаями с локализованным процессом.
Заключение. Прогрессирование РШМ I–II стадии обусловлено комплексом пролиферативных, метаболических и иммуносупрессивных факторов, при этом ITGA6 является потенциальным прогностическим маркером данного заболевания.
Об авторах
Е. А. ПростакишинаРоссия
Простакишина Елизавета Андреевна, младший научный сотрудник лаборатории биологии опухолевой прогрессии
Researcher ID (WOS): HCH-9870-2022.
Author ID (Scopus): 57468497700.
634009, г Томск, пер. Кооперативный, 5
Ю. М. Трущук
Россия
Трущук Юлия Михайловна, онколог
Researcher ID (WOS): KQU-0974-2024.
Author ID (Scopus): 57286591300.
634009, г Томск, пер. Кооперативный, 5
A. Д. Казакова
Россия
Казакова Анна Дмитриевна, младший научный сотрудник лаборатории трансляционной клеточной и молекулярной биомедицины
Researcher ID (WOS): GYJ-4914-2022.
Author ID (Scopus): 57735358300.
634050, г Томск, ул. Ленина, 36
П. С. Ямщиков
Россия
Ямщиков Павел Сергеевич, специалист по биоинформатике, лаборатория биологии опухолевой прогрессии
Researcher ID (WOS): AAE-3883-2022.
Author ID (Scopus): 57468957700.
634009, г Томск, пер. Кооперативный, 5
П. К. Козлова
Россия
Козлова Полина Константиновна, специалист по биоинформатике, лаборатория биологии опухолевой прогрессии
Researcher ID (WOS): JWA-4869-2024.
С. В. Фатеева
Россия
Фатеева Светлана Викторовна, кандидат медицинских наук, врач ультразвуковой диагностики, Научно-исследовательский институт онкологии, Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук; ассистент кафедры лучевой диагностики и лучевой терапии, ФГБОУ ВО «Сибирский государственный медицинский университет»
634009, г Томск, пер. Кооперативный, 5;
634050, г Томск, Московский тракт, 2
И. В. Ларионова
Россия
Ларионова Ирина Валерьевна, кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник лаборатории молекулярной терапии рака, Научно-исследовательский институт онкологии, Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук; старший научный сотрудник лаборатории трансляционной клеточной и молекулярной биомедицины, ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Томский государственный университет»
Researcher ID (WOS): R-2391-2017.
Author ID (Scopus): 57201182530.
634009, г Томск, пер. Кооперативный, 5;
634050, г Томск, ул. Ленина, 36
А. Л. Чернышова
Россия
Чернышова Алена Леонидовна, доктор медицинских наук, профессор РАН, профессор кафедры онкологии, ФГБОУ ВО «Новосибирский государственный медицинский университет» Минздрава России; директор Института онкологии и нейрохирургии, ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр им. акад. Е.Н. Мешалкина»
Researcher ID (WOS): C-8608-2012.
Author ID (Scopus): 55220758100.
630055, г Новосибирск, ул. Речкуновская, 15;
630091, г Новосибирск, Красный пр-т, 52
Е. В. Денисов
Россия
Денисов Евгений Владимирович, доктор биологических наук, профессор РАН, заведующий лабораторией биологии опухолевой прогрессии
Researcher ID (WOS): C-8662-2012.
Author ID (Scopus): 26653961800.
634009, г Томск, пер. Кооперативный, 5
Список литературы
1. Siegel R.L., Kratzer T.B., Giaquinto A.N., Sung H., Jemal A. Cancer statistics, 2025. CA Cancer J Clin. 2025; 75(1): 10–45. doi:10.3322/caac.21871.
2. Arbyn M., Weiderpass E., Bruni L., de Sanjosé S., Saraiya M., Ferlay J., Bray F. Estimates of incidence and mortality of cervical cancer in 2018: a worldwide analysis. Lancet Glob Health. 2020; 8(2): e191–e203. doi: 10.1016/s2214-109x(19)30482-6.
3. Flint M., Yi F., Saleh M., Liu X., Blank S.V., Liu Y. Cervical cancer in women under age 40: A cohort study of clinicopathological characteristics and fertility-sparing surgery outcomes. Gynecol Oncol Rep. 2025; 58: 101710. doi: 10.1016/j.gore.2025.101710.
4. Caruso G., Wagar M.K., Hsu H.C., Hoegl J., Rey Valzacchi G.M., Fernandes A., Cucinella G., Sahin Aker S., Jayraj A.S., Mauro J., Pareja R., Ramirez P.T. Cervical cancer: a new era. Int J Gynecol Cancer. 2024; 34(12): 1946–70. doi: 10.1136/ijgc-2024-005579.
5. Кравец О.А., Романова Е.А., Горбунова В.А. Клинические результаты лучевой и химиолучевой терапии местнораспространенного рака шейки матки. Российский онкологический журнал. 2020; 25(3): 92–102. chemoradiation therapy of locally advanced cervix cancer. Russian Journal of Oncology. 2020; 25(3): 92–102. (in Russian). doi: 10.17816/1028-9984-2020-25-3-92-102. EDN: THVKUP.
6. Рейес Сантьяго Д.К., Хаджимба А.С., Соболев И.В., Ильин А.А., Максимов С.Я. Результаты комбинированного лечения рака шейки матки IIA–IIIB стадий. Опухоли женской репродуктивной системы. 2018; 14(4): 50–55. doi: 10.17650/1994-4098-2018-14-4-50-55. EDN: YXHEAH.
7. Ecker S., Kirisits C., Schmid M., De Leeuw A., Seppenwoolde Y., Knoth J., Trnkova P., Heilemann G., Sturdza A., Kirchheiner K., Spampinato S., Serban M., Jürgenliemk-Schulz I., Chopra S., Nout R., Tanderup K., Pötter R., Eder-Nesvacil N. Tools for large-scale data analytics of an international multi-center study in radiation oncology for cervical cancer. Radiother Oncol. 2023; 182: 109524. doi: 10.1016/j.radonc.2023.109524.
8. Liu X., Meng Q., Wang W., Zhou Z., Zhang F., Hu K. Predictors of Distant Metastasis in Patients with Cervical Cancer Treated with Definitive Radiotherapy. J Cancer. 2019; 10(17): 3967–74. doi: 10.7150/jca.31538.
9. Wu C., Lv X., Wang F., Xu Q., Lou H., Zhang X. Predictors of distant metastasis or local recurrent after radiotherapy in patients with cervical cancer. BMC Cancer. 2025; 25(1): 364. doi: 10.1186/s12885-024-13282-7.
10. Chen X., Dong X., Li H., Wu T., Liu H., Wu J., Ge W., Hao L., Zhang Z. RNA-binding proteins signature is a favorable biomarker of prognosis, immunotherapy and chemotherapy response for cervical cancer. Cancer Cell Int. 2024; 24(1): 80. doi: 10.1186/s12935-024-03257-w.
11. Li J., Hou F., Teng Z., Xia W., Peng J. LncRNA HOXC-AS3 accelerates malignant proliferation of cervical cancer cells via stabilizing KDM5B. J Cancer Res Clin Oncol. 2024; 150(6): 294. doi: 10.1007/ s00432-024-05799-y.
12. Li Y., Hong Y., Shen H., Zhou J., Cesar D., Eleutério J.Jr., Matsuura M., Liu Y., Luo C., Li Q. FXR activation suppresses NF-κB signaling, proliferation and migration in cervical cancer cells. Transl Cancer Res. 2025; 14(4): 2440–56. doi: 10.21037/tcr-2025-522.
13. Hu D., Zhang Z., Zhang Y., Huang K., Li X. Identification of immune related molecular subtypes and prognosis model for predicting prognosis, drug resistance in cervical squamous cell carcinoma. Front Genet. 2023; 14: 1137995. doi: 10.3389/fgene.2023.1137995.
14. Feng S., Wang Z., Zhang H., Hou B., Xu Y., Hao S., Lu Y. Identification of prognostic biomarkers for cervical cancer based on programmed cell death-related genes and assessment of their immune profile and response to drug therapy. J Gene Med. 2024; 26(1): e3643. doi:10.1002/jgm.3643.
15. Sun K., Huang C., Li J.Z., Luo Z.X. Identification of a necroptosisrelated prognostic gene signature associated with tumor immune microenvironment in cervical carcinoma and experimental verification. World J Surg Oncol. 2022; 20(1): 342. doi:10.1186/s12957-022-02802-z.
16. Xing X., Tian Y., Jin X. Immune infiltration and a necroptosisrelated gene signature for predicting the prognosis of patients with cervical cancer. Front Genet. 2023; 13. doi: 10.3389/fgene.2022.1061107.
17. Fleischmann M., Chatzikonstantinou G., Fokas E., Wichmann J., Christiansen H., Strebhardt K., Rödel C., Tselis N., Rödel F. Molecular Markers to Predict Prognosis and Treatment Response in Uterine Cervical Cancer. Cancers. 2021; 13(22): 5748.
18. WHO Classification of Tumours of Female Reproductive Organs. Ed. R.J. Kurman, M.L. Carcangiu, C.S. Herrington, R.H. Young. 4th Edition. 2014. Vol. 6. ISBN: 978-92-832-2435-8.
19. Хохлова С.В., Кравец О.А., Морхов К.Ю., Нечушкина В.М., Саевец В.В., Тюляндина А.С., Ульрих Е.А., Усманова Л.Ш. Практические рекомендации по лекарственному лечению рака шейки матки. Злокачественные опухоли. 2022; 12(3S2-1): 240–59. doi: 10.18027/2224-5057-2022-12-3s2-240-259. EDN: EETIUT.
20. Ewels P., Magnusson M., Lundin S., Käller M. MultiQC: summarize analysis results for multiple tools and samples in a single report. Bioinformatics.2016; 32(19): 3047–48. doi: 10.1093/bioinformatics/btw354.
21. Dobin A., Davis C.A., Schlesinger F., Drenkow J., Zaleski C., Jha S., Batut P., Chaisson M., Gingeras T.R. STAR: ultrafast universal RNA-seq aligner. Bioinformatics. 2013; 29(1): 15–21. doi: 10.1093/bioinformatics/bts635.
22. Putri G.H., Anders S., Pyl P.T., Pimanda J.E., Zanini F. Analysing high-throughput sequencing data in Python with HTSeq 2.0. Bioinformatics. 2022; 38(10): 2943–45. doi: 10.1093/bioinformatics/btac166.
23. Love M.I., Huber W., Anders S. Moderated estimation of fold change and dispersion for RNA-seq data with DESeq2. Genome Biol. 2014; 15(12): 550. doi: 10.1186/s13059-014-0550-8.
24. Korotkevich G., Sukhov V., Budin N., Shpak B., Artyomov M.N., Sergushichev A. Fast gene set enrichment analysis. bioRxiv.2021. https://doi.org/10.1101/060012.
25. Zhen Y, Pavez M., Li X. The role of Pcdh10 in neurological disease and cancer. J Cancer Res Clin Oncol. 2023; 149(10): 8153–64. doi: 10.1007/s00432-023-04743-w.
26. Hu D.G., Marri S., Hulin J-A., McKinnon R.A., Mackenzie P.I., Meech R. The Somatic Mutation Landscape of UDP-Glycosyltransferase (UGT) Genes in Human Cancers. Cancers. 2022; 14(22): 5708. doi: 10.3390/cancers14225708.
27. Zhu Y., Wu Y., Yang L., Dou X., Jiang J., Wang L. Long non-coding RNAactivated by transforming growth factor-β promotes proliferation and invasion of cervical cancer cells by regulating the miR-144/ITGA6 axis. Exp Physiol. 2019; 104(6): 837–44. doi: 10.1113/ep087656.
28. Khademi R., Malekzadeh H., Bahrami S., Saki N., Khademi R., Villa-Diaz L.G. Regulation and Functions of α6-Integrin (CD49f) in Cancer Biology. Cancers. 2023; 15(13): 3466. doi: 10.3390/cancers15133466.
29. Du J., Luo H., Ye S., Zhang H., Zheng Z., Liu K. Unraveling IFI44L’s biofunction in human disease. Front Oncol. 2024; 14: 1436576. doi: 10.3389/fonc.2024.1436576.
30. Fu T., Liu J.X., Xie J., Gao Z., Yang Z. LAMC2 as a prognostic biomarker in human cancer: a systematic review and meta-analysis. BMJ Open. 2022; 12(11): e063682. doi: 10.1136/bmjopen-2022-063682.
31. Gong T.T., Liu F.H., Xiao Q., Li Y.Z., Wei Y.F., Xu H.L, Cao F., Sun M.L, Jiang F.L., Tao T., Ma Q.P., Qin X., Song Y., Gao S., Wu L., Zhao Y.H., Huang D.H., Wu Q.J. SH3RF2 contributes to cisplatin resistance in ovarian cancer cells by promoting RBPMS degradation. Commun Biol. 2024; 7(1): 67. doi: 10.1038/s42003-023-05721-1.
32. Lin X., Yoshikawa N., Liu W., Matsukawa T., Nakamura K., Yoshihara M., Koya Y., Sugiyama M., Tamauchi S., Ikeda Y., Yokoi A., Shimizu Y., Kajiyama H.. DDIT4 Facilitates Lymph Node Metastasis via the Activation of NF-κB Pathway and Epithelial-Mesenchymal Transition. Reprod Sci. 2023; 30(9): 2829–41. doi: 10.1007/s43032-023-01230-y.
33. Hakim R.U., Amin T., U.l. Islam S.M.B. Advances and Challenges in Cervical Cancer: From Molecular Mechanisms and Global Epidemiology to Innovative Therapies and Prevention Strategies. Cancer Control. 2025; 32: 10732748251336415. doi: 10.1177/10732748251336415.
34. Zhou Y., Rassy E., Coutte A., Achkar S., Espenel S., Genestie C., Pautier P., Morice P., Gouy S., Chargari C. Current Standards in the Management of Early and Locally Advanced Cervical Cancer: Update on the Benefit of Neoadjuvant/Adjuvant Strategies. Cancers (Basel). 2022; 14(10): 2449. doi: 10.3390/cancers14102449.
35. Yang C., Zhang Z.C., Liu T.B., Xu Y., Xia B.R., Lou G. E2F1/2/7/8 as independent indicators of survival in patients with cervical squamous cell carcinoma. Cancer Cell Int. 2020; 20: 500. doi: 10.1186/s12935-020-01594-0.
36. Li H.L., Dong L.L., Jin M.J., Li Q.Y., Wang X., Jia M.Q., Song J., Zhang S.Y., Yuan S. A Review of the Regulatory Mechanisms of N-Myc on Cell Cycle. Molecules. 2023; 28(3): 1141.
37. Gao Y., Qiao X., Liu Z., Zhang W. The role of E2F2 in cancer progression and its value as a therapeutic target. Front Immunol. 2024; 15: 1397303. doi: 10.3389/fimmu.2024.1397303.
38. Liu Y., Wang Y., Tan S., Shi X., Wen J., Chen D., Zhao Y., Pan W., Jia Z., Lu C., Lou G. Characterization of G2/M checkpoint classifier for personalized treatment in uterine corpus endometrial carcinoma. Cancer Cell Intern. 2025; 25(1): 34. doi: 10.1186/s12935-025-03667-4.
39. Lin X., Fang Y., Mi X., Fu J., Chen S., Wu M., Jin N. Asiatic acid inhibits cervical cancer cell proliferation and migration via PI3K/AKT/ mTOR signaling pathway. Heliyon. 2024; 10(13): e34047. doi: 10.1016/j.heliyon.2024.e34047.
40. Ueda H., Ishiguro T., Mori Y., Yamawaki K., Okamoto K., Enomoto T., Yoshihara K. Glycolysis-mTORC1 crosstalk drives proliferation of patientderived endometrial cancer spheroid cells with ALDH activity. Cell Death Disc. 2024; 10(1): 435. doi: 10.1038/s41420-024-02204-y.
41. Datta A., West C., O’Connor J.P.B., Choudhury A., Hoskin P. Impact of hypoxia on cervical cancer outcomes. Int J Gynecol Cancer. 2021; 31(11): 1459–70. doi: 10.1136/ijgc-2021-002806.
42. Abdel-Wahab A.F., Mahmoud W., Al-Harizy R.M. Targeting glucose metabolism to suppress cancer progression: prospective of anti-glycolytic cancer therapy. Pharmacol Res. 2019; 150: 104511. doi: 10.1016/j.phrs.2019.104511.
43. Sheng X., Wang M.-M., Zhang G.-D., Su Y., Fang H.-B., Yu Z.-H., Su Z. Dual inhibition of oxidative phosphorylation and glycolysis to enhance cancer therapy. Bioorg Chem. 2024; 147: 107325. doi: 10.1016/j.bioorg.2024.107325.
44. Niu N., Ye J., Hu Z., Zhang J., Wang Y. Regulative Roles of Metabolic Plasticity Caused by Mitochondrial Oxidative Phosphorylation and Glycolysis on the Initiation and Progression of Tumorigenesis. Int J Mol Sci. 2023; 24(8): 7076. doi: 10.3390/ijms24087076.
45. Shi X., Yang J., Deng S., Xu H., Wu D., Zeng Q., Wang S., Hu T, Wu F., Zhou H. TGF-β signaling in the tumor metabolic microenvironment and targeted therapies. J Hematol Oncol. 2022; 15(1): 135. doi: 10.1186/s13045-022-01349-6.
46. Hollern D.P., Swiatnicki M.R., Andrechek E.R. Histological subtypes of mouse mammary tumors reveal conserved relationships to human cancers. PLOS Genetics. 2018; 14(1): e1007135. doi: 10.1371/journal.pgen.1007135.
47. Yin S., Cui H., Qin S., Yu S. Manipulating TGF-β signaling to optimize immunotherapy for cervical cancer. Biomed Pharmacother. 2023; 166: 115355. doi: 10.1016/j.biopha.2023.115355.
48. Birrer M.J., Fujiwara K., Oaknin A., Randall L., Ojalvo L.S., Valencia C., Ray-Coquard I. The Changing Landscape of Systemic Treatment for Cervical Cancer: Rationale for Inhibition of the TGF-β and PD-L1 Pathways. Front Oncol. 2022; 12: 814169. doi: 10.3389/fonc.2022.814169.
49. Baba A.B., Rah B., Bhat G.R., Mushtaq I., Parveen S., Hassan R., Hameed Zargar M., Afroze D. Transforming Growth Factor-Beta (TGF-β) Signaling in Cancer-A Betrayal Within. Front Pharmacol. 2022; 13: 791272. doi: 10.3389/fphar.2022.791272.
50. Rangel-Corona R., Corona-Ortega T., Soto-Cruz I., López-Labra A., Pablo-Arcos T., Torres-Guarneros C.F., Weiss-Steider B. Evidence that cervical cancer cells secrete IL-2, which becomes an autocrine growth factor. Cytokine. 2010; 50(3): 273–77. doi:10.1016/j.cyto.2010.02.013.
51. Tilborghs S., Corthouts J., Verhoeven Y., Arias D., Rolfo C., Trinh X.B., van Dam P.A. The role of Nuclear Factor-kappa B signaling in human cervical cancer. Crit Rev Oncol Hematol. 2017; 120: 141–50. doi: 10.1016/j.critrevonc.2017.11.001.
52. Sahin K., Tuzcu M., Basak N., Caglayan B., Kilic U., Sahin F., Kucuk O. Sensitization of Cervical Cancer Cells to Cisplatin by Genistein: The Role of NFκB and Akt/mTOR Signaling Pathways. J Oncol. 2012; 2012: 461562. doi: 10.1155/2012/461562.
Дополнительные файлы
|
|
1. Рис. 1. Транскрипционные особенности РШМ I–II стадии у пациенток с и без прогрессирования заболевания: А – тепловая карта уровня экспрессии генов в ткани опухоли; Б – сигнальные пути, выраженные при прогрессирова нии заболевания; В – уровень экспрессии гена ITGA6 в ткани опухоли. Примечания: NES – нормализованный показатель обогащения; NES>0 – активация сигнального пути; NES<0 подавление сигнального пути; рисунок выполнен авторами | |
| Тема | ||
| Тип | Исследовательские инструменты | |
Посмотреть
(563KB)
|
Метаданные ▾ | |
Рецензия
Для цитирования:
Простакишина Е.А., Трущук Ю.М., Казакова A.Д., Ямщиков П.С., Козлова П.К., Фатеева С.В., Ларионова И.В., Чернышова А.Л., Денисов Е.В. Молекулярные особенности прогрессирования рака шейки матки I-II стадии. Сибирский онкологический журнал. 2026;25(3):48-56. https://doi.org/10.21294/1814-4861-2026-25-3-48-56
For citation:
Prostakishina E.A., Trushchuk Yu.M., Kazakova A.D., Iamshikov P.S., Kozlova P.K., Fateeva S.V., Larionova I.V., Chernyshova A.L., Denisov E.V. Molecular features associated with progression of stage I-II cervical cancer. Siberian journal of oncology. 2026;25(3):48-56. (In Russ.) https://doi.org/10.21294/1814-4861-2026-25-3-48-56
JATS XML








































