Preview

Сибирский онкологический журнал

Расширенный поиск

Моногенная предрасположенность к развитию колоректального рака: особенности канцерогенеза и трансляционные аспекты

https://doi.org/10.21294/1814-4861-2025-24-5-113-127

Аннотация

Цель исследования – обобщение имеющихся сведений о наследственных разновидностях колоректального рака.

Материал и методы. Поиск соответствующих источников производился в системах Medline, Cochrane Library, Elibrary, включались публикации с января 2002 г. по октябрь 2025 г. Из 3 000 найденных исследований 79 были использованы для написания систематического обзора.

Результаты. На долю известных наследственных разновидностей приходится до 4–5 % всех случаев колоректального рака. Помимо семейного аденоматозного полипоза, синдрома Линча и MUTYH-ассоциированного полипоза, можно выделить еще как минимум 15 более редких нозологических форм наследственного рака толстой кишки (РТК). Каждое из этих заболеваний отличается своеобразием клинической картины и биологической природы. Эти особенности обусловливают отличия в подходах к профилактике и лечению разных форм наследственного РТК. В отличие от большинства опухолевых синдромов других локализаций, для которых характерен аутосомно-доминантный тип наследования, некоторые разновидности РТК наследуются по аутосомно-рецессивному механизму. Изучение наследственного РТК способствует разработке новых подходов к терапии спорадических опухолей толстой кишки, имеющих соматические повреждения в тех же генах.

Заключение. В обзоре представлены подробные сведения о генетических причинах, механизмах канцерогенеза и клинических особенностях как хорошо известных, так и недавно открытых типов наследственного РТК.

Об авторах

Г. А. Янус
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет; НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова
Россия

Янус Григорий Аркадьевич - кандидат медицинских наук, научный сотрудник, НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова; научный сотрудник.

194100, Санкт-Петербург, ул. Литовская, 2; 197758, Санкт-Петербург, п. Песочный, ул. Ленинградская, 68



А. Г. Иевлева
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет; НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова
Россия

Иевлева Аглая Геннадиевна - старший научный сотрудник научной лаборатории молекулярной онкологии, НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова; доцент кафедры общей и медицинской молекулярной генетики.

194100, Санкт-Петербург, ул. Литовская, 2; 197758, Санкт-Петербург, п. Песочный, ул. Ленинградская, 68



А. Ю. Малыгин
НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова
Россия

Малыгин Артур Юрьевич - онколог клинико-диагностического отделения. SPIN-код: 5019-2968

197758, Санкт-Петербург, п. Песочный, ул. Ленинградская, 68



Е. Н. Суспицын
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет; НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова
Россия

Суспицын Евгений Николаевич - доктор медицинских наук, старший научный сотрудник лаборатории молекулярной онкологии, НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова; доцент кафедры общей и молекулярной генетики.

194100, Санкт-Петербург, ул. Литовская, 2; 197758, Санкт-Петербург, п. Песочный, ул. Ленинградская, 68



С. Н. Алексахина
НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова
Россия

Алексахина Светлана Николаевна - кандидат биологических наук, старший научный сотрудник, SPIN-код: 6898-4687. Researcher ID (WOS): B-2136-2013. Author ID (Scopus): 56003023200.

197758, Санкт-Петербург, п. Песочный, ул. Ленинградская, 68



Е. Н. Имянитов
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет; НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова; Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова
Россия

Имянитов Евгений Наумович - доктор медицинских наук, член-корреспондент РАН, заведующий кафедрой общей и медицинской молекулярной генетики, Санкт-Петербургский ГПМУ; заведующий научным отделением биологии опухолевого роста, НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова; профессор кафедры онкологии, Северо-Западный ГМУ им. И.И. Мечникова. SPIN-код: 1909-7323. Author ID (Scopus): 7003644486.

194100, Санкт-Петербург, ул. Литовская, 2; 197758, Санкт-Петербург, п. Песочный, ул. Ленинградская, 68; 191015, Санкт-Петербург, ул. Кирочная, 41



Список литературы

1. Win A.K., Jenkins M.A., Dowty J.G., Antoniou A.C., Lee A., Giles G.G., Buchanan D.D., Clendenning M., Rosty C., Ahnen D.J., Thibodeau S.N., Casey G., Gallinger S., le Marchand L., Haile R.W., Potter J.D., Zheng Y., Lindor N.M., Newcomb P.A., Hopper J.L., MacInnis R.J. Prevalence and Penetrance of Major Genes and Polygenes for Colorectal Cancer. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2017; 26(3): 404–12. doi: 10.1158/10559965.E.PI-16-0693.

2. Jenkins M.A., Baglietto L., Dite G.S., Jolley D.J., Southey M.C., Whitty J., Mead L.J., St John D.J., Macrae F.A., Bishop D.T., Venter D.J., Giles G.G., Hopper J.L. After hMSH2 and hMLH1--what next? Analysis of three-generational, population-based, early-onset colorectal cancer families. Int J Cancer. 2002; 102(2): 166–71. doi: 10.1002/ijc.10670.

3. Gerstung M., Jolly C., Leshchiner I., Dentro S.C., Gonzalez S., Rosebrock D., Mitchell T.J., Rubanova Y., Anur P., Yu K., Tarabichi M., Deshwar A., Wintersinger J., Kleinheinz K., Vázquez-García I., Haase K., Jerman L., Sengupta S., Macintyre G., Malikic S., Donmez N., Livitz D.G., Cmero M., Demeulemeester J., Schumacher S., Fan Y., Yao X., Lee J., Schlesner M., Boutros P.C., Bowtell D.D., Zhu H., Getz G., Imielinski M., Beroukhim R., Sahinalp S.C., Ji Y., Peifer M., Markowetz F., Mustonen V., Yuan K., Wang W., Morris Q.D.; PCAWG Evolution & Heterogeneity Working Group; Spellman P.T., Wedge D.C., van Loo P.; PCAWG Consortium. The evolutionary history of 2,658 cancers. Nature. 2020; 578(7793): 122–28. doi: 10.1038/s41586-019-1907-7.

4. Tümen D., Heumann P., Huber J., Hahn N., Macek C., Ernst M., Kandulski A., Kunst C., Gülow K. Unraveling Cancer’s Wnt Signaling: Dynamic Control through Protein Kinase Regulation. Cancers (Basel). 2024; 16(15): 2686. doi: 10.3390/cancers16152686.

5. Flanagan D.J., Pentinmikko N., Luopajärvi K., Willis N.J., Gilroy K., Raven A.P., Mcgarry L., Englund J.I., Webb A.T., Scharaw S., Nasreddin N., Hodder M.C., Ridgway R.A., Minnee E., Sphyris N., Gilchrist E., Najumudeen A.K., Romagnolo B., Perret C., Williams A.C., Clevers H., Nummela P., Lähde M., Alitalo K., Hietakangas V., Hedley A., Clark W., Nixon C., Kirschner K., Jones E.Y., Ristimäki A., Leedham S.J., Fish P.V., Vincent J.P., Katajisto P., Sansom O.J. NOTUM from Apc-mutant cells biases clonal competition to initiate cancer. Nature. 2021; 594(7863): 430–35. doi: 10.1038/s41586-021-03525-z.

6. Esplin E.D., Hanson C., Wu S., Horning A.M., Barapour N., Nevins S.A., Jiang L., Contrepois K., Lee H., Guha T.K., Hu Z., Laquindanum R., Mills M.A., Chaib H., Chiu R., Jian R., Chan J., Ellenberger M., Becker W.R., Bahmani B., Khan A., Michael B., Weimer A.K., Esplin D.G., Shen J., Lancaster S., Monte E., Karathanos T.V., Ladabaum U., Longacre T.A., Kundaje A., Curtis C., Greenleaf W.J., Ford J.M., Snyder M.P. Multiomic analysis of familial adenomatous polyposis reveals molecular pathways associated with early tumorigenesis. Nat Cancer. 2024; 5(11): 1737–53. doi: 10.1038/s43018-024-00831-z.

7. Poylin V.Y., Shaffer V.O., Felder S.I., Goldstein L.E., Goldberg J.E., Kalady M.F., Lightner A.L., Feingold D.L., Paquette I.M.; Clinical Practice Guidelines Committee of the American Society of Colon and Rectal Surgeons. The American Society of Colon and Rectal Surgeons Clinical Practice Guidelines for the Management of Inherited Adenomatous Polyposis Syndromes. Dis Colon Rectum. 2024; 67(2): 213–27. doi: 10.1097/DCR.0000000000003072.

8. Zaffaroni G., Mannucci A., Koskenvuo L., de Lacy B., Maffioli A., Bisseling T., Half E., Cavestro G.M., Valle L., Ryan N., Aretz S., Brown K., Buttitta F., Carneiro F., Claber O., Blanco-Colino R., Collard M., Crosbie E., Cunha M., Doulias T., Fleming C., Heinrich H., Hüneburg R., Metras J., Nagtegaal I., Negoi I., Nielsen M., Pellino G., Ricciardiello L., Sagir A., Sánchez-Guillén L., Seppälä T.T., Siersema P., Striebeck B., Sampson J.R., Latchford A., Parc Y., Burn J., Möslein G. Updated European guidelines for clinical management of familial adenomatous polyposis (FAP), MUTYH-associated polyposis (MAP), gastric adenocarcinoma, proximal polyposis of the stomach (GAPPS) and other rare adenomatous polyposis syndromes: a joint EHTG-ESCP revision. Br J Surg. 2024; 111(5): znae070. doi: 10.1093/bjs/znae070.

9. NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology (NCCN Guidelines®) for Genetic/Familial High-Risk Assessment. Colorectal V.3.2024. ©National Comprehensive Cancer Network, Inc. 2024.

10. Lammi L., Arte S., Somer M., Jarvinen H., Lahermo P., Thesleff I., Pirinen S., Nieminen P. Mutations in AXIN2 cause familial tooth agenesis and predispose to colorectal cancer. Am J Hum Genet. 2004; 74(5): 1043–50. doi: 10.1086/386293.

11. Leclerc J., Beaumont M., Vibert R., Pinson S., Vermaut C., Flament C., Lovecchio T., Delattre L., Demay C., Coulet F., Guillerm E., Hamzaoui N., Benusiglio P.R., Brahimi A., Cornelis F., Delhomelle H., Fert-Ferrer S., Fournier B.P.J., Hovnanian A., Legrand C., Lortholary A., Malka D., Petit F., Saurin J.C., Lejeune S., Colas C., Buisine M.P. AXIN2 germline testing in a French cohort validates pathogenic variants as a rare cause of predisposition to colorectal polyposis and cancer. Genes Chromosomes Cancer. 2023; 62(4): 210–22. doi: 10.1002/gcc.23112.

12. Ponti G., Castellsagué E., Ruini C., Percesepe A., Tomasi A. Mismatch repair genes founder mutations and cancer susceptibility in Lynch syndrome. Clin Genet. 2015; 87(6): 507–16. doi: 10.1111/cge.12529.

13. Pathak S.J., Mueller J.L., Okamoto K., Das B., Hertecant J., Greenhalgh L., Cole T., Pinsk V., Yerushalmi B., Gurkan O.E., Yourshaw M., Hernandez E., Oesterreicher S., Naik S., Sanderson I.R., Axelsson I., Agardh D., Boland C.R., Martin M.G., Putnam C.D., Sivagnanam M. EPCAM mutation update: Variants associated with congenital tufting enteropathy and Lynch syndrome. Hum Mutat. 2019; 40(2): 142–61. doi: 10.1002/humu.23688.

14. Sullivan B.A., Noujaim M., Roper J. Cause, Epidemiology, and Histology of Polyps and Pathways to Colorectal Cancer. Gastrointest Endosc Clin N Am. 2022; 32(2): 177–94. doi: 10.1016/j.giec.2021.12.001.

15. Moreira L., Balaguer F., Lindor N., de la Chapelle A., Hampel H., Aaltonen L.A., Hopper J.L., Le Marchand L., Gallinger S., Newcomb P.A., Haile R., Thibodeau S.N., Gunawardena S., Jenkins M.A., Buchanan D.D., Potter J.D., Baron J.A., Ahnen D.J., Moreno V., Andreu M., Ponz de Leon M., Rustgi A.K., Castells A.; EPICOLON Consortium. Identification of Lynch syndrome among patients with colorectal cancer. JAMA. 2012; 308(15): 1555–65. doi: 10.1001/jama.2012.13088.

16. Vos J.R., Fakkert I.E., Spruijt L., Willems R.W., Langenveld S., Mensenkamp A.R., Leter E.M., Nagtegaal ID., Ligtenberg M.J.L., Hoogerbrugge N.; FINAL Group. Evaluation of yield and experiences of age-related molecular investigation for heritable and nonheritable causes of mismatch repair deficient colorectal cancer to identify Lynch syndrome. Int J Cancer. 2020; 147(8): 2150–58. doi: 10.1002/ijc.33117.

17. Seppälä T.T., Latchford A., Negoi I., Sampaio Soares A., JimenezRodriguez R., Sánchez-Guillén L., Evans D.G., Ryan N., Crosbie E.J., Dominguez-Valentin M., Burn J., Kloor M., Knebel Doeberitz M.V., Duijnhoven F.J.B.V., Quirke P., Sampson J.R., Møller P., Möslein G.; European Hereditary Tumour Group (EHTG) and European Society of Coloproctology (ESCP). European guidelines from the EHTG and ESCP for Lynch syndrome: an updated third edition of the Mallorca guidelines based on gene and gender. Br J Surg. 2021; 108(5): 484–98. doi: 10.1002/bjs.11902.

18. Ahadova A., Gallon R., Gebert J., Ballhausen A., Endris V., Kirchner M., Stenzinger A., Burn J., von Knebel Doeberitz M., Bläker H., Kloor M. Three molecular pathways model colorectal carcinogenesis in Lynch syndrome. Int J Cancer. 2018; 143(1): 139–50. doi: 10.1002/ijc.31300.

19. Ahadova A., Stenzinger A., Seppälä T., Hüneburg R., Kloor M., Bläker H.; Lynpath Investigators. A “Two-in-One Hit” Model of Shortcut Carcinogenesis in MLH1 Lynch Syndrome Carriers. Gastroenterology. 2023; 165(1): 267–70. e4. doi: 10.1053/j.gastro.2023.03.007.

20. Engel C., Vasen H.F., Seppälä T., Aretz S., BigirwamunguBargeman M., de Boer S.Y., Bucksch K., Büttner R., Holinski-Feder E., Holzapfel S., Hüneburg R., Jacobs M.A.J.M., Järvinen H., Kloor M., von Knebel Doeberitz M., Koornstra J.J., van Kouwen M., Langers A.M., van de Meeberg P.C., Morak M., Möslein G., Nagengast F.M., Pylvänäinen K., Rahner N., Renkonen-Sinisalo L., Sanduleanu S., Schackert H.K., Schmiegel W., Schulmann K., Steinke-Lange V., Strassburg C.P., Vecht J., Verhulst M.L., de Vos Tot Nederveen Cappel W., Zachariae S., Mecklin J.P., Loeffler M.; German HNPCC Consortium, the Dutch Lynch Syndrome Collaborative Group, and the Finnish Lynch Syndrome Registry. No Difference in Colorectal Cancer Incidence or Stage at Detection by Colonoscopy Among 3 Countries With Different Lynch Syndrome Surveillance Policies. Gastroenterology. 2018; 155(5): 1400–1409.e2. doi: 10.1053/j.gastro.2018.07.030.

21. Seppälä T.T., Ahadova A., Dominguez-Valentin M., Macrae F., Evans D.G., Therkildsen C., Sampson J., Scott R., Burn J., Möslein G., Bernstein I., Holinski-Feder E., Pylvänäinen K., Renkonen-Sinisalo L., Lepistö A., Lautrup C.K., Lindblom A., Plazzer J.P., Winship I., Tjandra D., Katz L.H., Aretz S., Hüneburg R., Holzapfel S., Heinimann K., Valle A.D., Neffa F., Gluck N., de Vos Tot Nederveen Cappel W.H., Vasen H., Morak M., Steinke-Lange V., Engel C., Rahner N., Schmiegel W., Vangala D., Thomas H., Green K., Lalloo F., Crosbie E.J., Hill J., Capella G., Pineda M., Navarro M., Blanco I., Ten Broeke S., Nielsen M., Ljungmann K., Nakken S., Lindor N., Frayling I., Hovig E., Sunde L., Kloor M., Mecklin J.P., Kalager M., Møller P. Lack of association between screening interval and cancer stage in Lynch syndrome may be accounted for by over-diagnosis; a prospective Lynch syndrome database report. Hered Cancer Clin Pract. 2019; 17: 8. doi: 10.1186/s13053-019-0106-8.

22. Dominguez-Valentin M., Haupt S., Seppälä T.T., et al. Mortality by age, gene and gender in carriers of pathogenic mismatch repair gene variants receiving surveillance for early cancer diagnosis and treatment: a report from the prospective Lynch syndrome database. E.ClinicalMedicine. 2023; 58: 101909. doi: 10.1016/j.eclinm.2023.101909.

23. Castillo-Iturra J., Sánchez A., Balaguer F. Colonoscopic surveillance in Lynch syndrome: guidelines in perspective. Fam Cancer. 2024; 23(4): 459–68. doi: 10.1007/s10689-024-00414-y.

24. Miyakura Y., Chino A., Tanakaya K., Lefor A.K., Akagi K., Takao A., Yamada M., Ishida H., Komori K., Sasaki K., Miguchi M., Hirata K., Sudo T., Ishikawa T., Yamaguchi T., Tomita N., Ajioka Y. Current practice of colonoscopy surveillance in patients with lynch syndrome: A multicenter retrospective cohort study in Japan. DEN Open. 2022; 3(1): e179. doi: 10.1002/deo2.179.

25. Burn J., Sheth H., Elliott F., Reed L., Macrae F., Mecklin J.P., Möslein G., McRonald F.E., Bertario L., Evans D.G., Gerdes A.M., Ho J.W.C., Lindblom A., Morrison P.J., Rashbass J., Ramesar R., Seppälä T., Thomas H.J.W., Pylvänäinen K., Borthwick G.M., Mathers J.C., Bishop D.T.; CAPP2 Investigators. Cancer prevention with aspirin in hereditary colorectal cancer (Lynch syndrome), 10-year follow-up and registry-based 20-year data in the CAPP2 study: a double-blind, randomised, placebo-controlled trial. Lancet. 2020; 395(10240): 1855–63. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30366-4.

26. Das A., MacFarland S.P., Meade J., Hansford J.R., Schneider K.W., Kuiper R.P., Jongmans M.C.J., Lesmana H., Schultz K.A.P., Nichols K.E., Durno C., Zelley K., Porter C.C., States L.J., Ben-Shachar S., Savage S.A., Kalish J.M., Walsh M.F., Scott H.S., Plon S.E., Tabori U. Clinical Updates and Surveillance Recommendations for DNA Replication Repair Deficiency Syndromes in Children and Young Adults. Clin Cancer Res. 2024; 30(16): 3378–87. doi: 10.1158/1078-0432.C.CR-23-3994.

27. Gallon R., Brekelmans C., Martin M., Bours V., Schamschula E., Amberger A., Muleris M., Colas C., Dekervel J., de Hertogh G., Coupier J., Colleye O., Sepulchre E., Burn J., Brems H., Legius E., Wimmer K. Constitutional mismatch repair deficiency Constitutional mismatch repair deficiency mimicking Lynch syndrome is associated with hypomorphic mismatch repair gene variants. NPJ Precis Oncol. 2024; 8(1): 119. doi: 10.1038/s41698-024-00603-z.

28. Aretz S., Tricarico R., Papi L., Spier I., Pin E., Horpaopan S., Cordisco E.L., Pedroni M., Stienen D., Gentile A., Panza A., Piepoli A., de Leon M.P., Friedl W., Viel A., Genuardi M. MUTYH-associated polyposis (M.AP): evidence for the origin of the common European mutations p.Tyr179Cys and p.Gly396Asp by founder events. Eur J Hum Genet. 2014; 22(7): 923–29. doi: 10.1038/ejhg.2012.309.

29. Park J.E., Lee T., Cho E.H., Jang M.A., Won D., Park B., Ki C.S., Kong S.Y. Carrier Frequency and Incidence of MUTYH-Associated Polyposis Based on Database Analysis in East Asians and Koreans. Ann Lab Med. 2025; 45(1): 77–84. doi: 10.3343/alm.2024.0242.

30. Aelvoet A.S., Buttitta F., Ricciardiello L., Dekker E. Management of familial adenomatous polyposis and MUTYH-associated polyposis; new insights. Best Pract Res Clin Gastroenterol. 2022; 58–59: 101793. doi: 10.1016/j.bpg.2022.101793.

31. Robinson P.S., Thomas L.E., Abascal F., Jung H., Harvey L.M.R., West H.D., Olafsson S., Lee B.C.H., Coorens T.H.H., Lee-Six H., Butlin L., Lander N., Truscott R., Sanders M.A., Lensing S.V., Buczacki S.J.A., Ten Hoopen R., Coleman N., Brunton-Sim R., Rushbrook S., Saeb-Parsy K., Lalloo F., Campbell P.J., Martincorena I., Sampson J.R., Stratton M.R. Inherited MUTYH mutations cause elevated somatic mutation rates and distinctive mutational signatures in normal human cells. Nat Commun. 2022; 13(1): 3949. doi: 10.1038/s41467-022-31341-0.

32. Sherwood K., Ward J.C., Soriano I., Martin L., Campbell A., Rahbari R., Kafetzopoulos I., Sproul D., Green A., Sampson J.R., Donaldson A., Ong K.R., Heinimann K., Nielsen M., Thomas H., Latchford A., Palles C., Tomlinson I. Germline de novo mutations in families with Mendelian cancer syndromes caused by defects in DNA repair. Nat Commun. 2023; 14(1): 3636. doi: 10.1038/s41467-023-39248-0.

33. Disel U., Sivakumar S., Pham T., Fleischmann Z., Anu R.I., Sokol E.S., Kurzrock R. Increased KRAS G12C Prevalence, High Tumor Mutational Burden, and Specific Mutational Signatures Are Associated With MUTYH Mutations: A Pan-Cancer Analysis. Oncologist. 2024; 29(2): 213–23. doi: 10.1093/oncolo/oyad230.

34. Volkov N.M., Yanus G.A., Ivantsov A.O., Moiseenko F.V., Matorina O.G., Bizin I.V., Moiseyenko V.M., Imyanitov E.N. Efficacy of immune checkpoint blockade in MUTYH-associated hereditary colorectal cancer. Invest New Drugs. 2020; 38(3): 894–98. doi: 10.1007/s10637019-00842-z.

35. Mathias-Machado M.C., Peixoto R.D., Ashton-Prolla P., da Silva L.M., Dienstmann R. Complete Response to Immunotherapy in a Patient with MUTYH-Associated Polyposis and Gastric Cancer: A Case Report. Case Rep Oncol. 2023; 16(1): 504–10. doi: 10.1159/000530965.

36. Grolleman J.E., de Voer R.M., Elsayed F.A., Nielsen M., Weren R.D.A., Palles C., Ligtenberg M.J.L., Vos J.R., Ten Broeke S.W., de Miranda N.F.C.C., Kuiper R.A., Kamping E.J., Jansen E.A.M., Vink-Börger M.E., Popp I., Lang A., Spier I., Hüneburg R., James P.A., Li N., Staninova M., Lindsay H., Cockburn D., Spasic-Boskovic O., Clendenning M., Sweet K., Capellá G., Sjursen W., Høberg-Vetti H., Jongmans M.C., Neveling K., Geurts van Kessel A., Morreau H., Hes F.J., Sijmons R.H., Schackert H.K., Ruiz-Ponte C., Dymerska D., Lubinski J., Rivera B., Foulkes W.D., Tomlinson I.P., Valle L., Buchanan D.D., Kenwrick S., Adlard J., Dimovski A.J., Campbell I.G., Aretz S., Schindler D., van Wezel T., Hoogerbrugge N., Kuiper R.P. Mutational Signature Analysis Reveals NTHL1 Deficiency to Cause a Multitumor Phenotype. Cancer Cell. 2019; 35(2): 256–66. e5. doi: 10.1016/j.ccell.2018.12.011.

37. Palles C., West H.D., Chew E., Galavotti S., Flensburg C., Grolleman J.E., Jansen E.A.M., Curley H., Chegwidden L., Arbe-Barnes E.H., Lander N., Truscott R., Pagan J., Bajel A., Sherwood K., Martin L., Thomas H., Georgiou D., Fostira F., Goldberg Y., Adams D.J., van der Biezen S.A.M., Christie M., Clendenning M., Thomas L.E., Deltas C., Dimovski A.J., Dymerska D., Lubinski J., Mahmood K., van der Post R.S., Sanders M., Weitz J., Taylor J.C., Turnbull C., Vreede L., van Wezel T., Whalley C., Arnedo-Pac C., Caravagna G., Cross W., Chubb D., Frangou A., Gruber A.J., Kinnersley B., Noyvert B., Church D., Graham T., Houlston R., Lopez-Bigas N., Sottoriva A., Wedge D.; Genomics England Research Consortium; CORGI Consortium; WGS500 Consortium; Jenkins M.A., Kuiper R.P., Roberts A.W., Cheadle J.P., Ligtenberg M.J.L., Hoogerbrugge N., Koelzer V.H., Rivas A.D., Winship I.M., Ponte C.R., Buchanan D.D., Power D.G., Green A., Tomlinson I.P.M., Sampson J.R., Majewski I.J., de Voer R.M. Germline MBD4 deficiency causes a multi-tumor predisposition syndrome. Am J Hum Genet. 2022; 109(5): 953–60. doi: 10.1016/j.ajhg.2022.03.018.

38. Beck S.H., Jelsig A.M., Yassin H.M., Lindberg L.J., Wadt K.A.W., Karstensen J.G. Intestinal and extraintestinal neoplasms in patients with NTHL1 tumor syndrome: a systematic review. Fam Cancer. 2022; 21(4): 453–62. doi: 10.1007/s10689-022-00291-3.

39. Olkinuora A.P., Mayordomo A.C., Kauppinen A.K., Cerliani M.B., Coraglio M., Collia Á.K., Gutiérrez A., Alvarez K., Cassana A., LopézKöstner F., Jauk F., García-Rivello H., Ristimäki A., Koskenvuo L., Lepistö A., Nieminen T.T., Vaccaro C.A., Pavicic W.H., Peltomäki P. Monoand biallelic germline variants of DNA glycosylase genes in colon adenomatous polyposis families from two continents. Front Oncol. 2022; 12: 870863. doi: 10.3389/fonc.2022.870863.

40. Vuković Đerfi K., Salar A., Cacev T., Kapitanović S. EMAST Type of Microsatellite Instability-A Distinct Entity or Blurred Overlap between Stable and MSI Tumors.Genes (Basel). 2023; 14(7): 1474. doi: 10.3390/genes14071474.

41. Adam R., Spier I., Zhao B., Kloth M., Marquez J., Hinrichsen I., Kirfel J., Tafazzoli A., Horpaopan S., Uhlhaas S., Stienen D., Friedrichs N., Altmüller J., Laner A., Holzapfel S., Peters S., Kayser K., Thiele H., Holinski-Feder E., Marra G., Kristiansen G., Nöthen M.M., Büttner R., Möslein G., Betz R.C., Brieger A., Lifton R.P., Aretz S. Exome Sequencing Identifies Biallelic MSH3 Germline Mutations as a Recessive Subtype of Colorectal Adenomatous Polyposis. Am J Hum Genet. 2016; 99(2): 337–51. doi: 10.1016/j.ajhg.2016.06.015.

42. Chen M.H., Chang S.C., Lin P.C., Yang S.H., Lin C.C., Lan Y.T., Lin H.H., Lin C.H., Lai J.I., Liang W.Y., Lu M.L., Yang M.H., Chao Y. Combined Microsatellite Instability and Elevated Microsatellite Alterations at Selected Tetranucleotide Repeats (EMAST) Might Be a More Promising Immune Biomarker in Colorectal Cancer. Oncologist. 2019; 24(12): 1534–42. doi: 10.1634/theoncologist.2019-0171.

43. Salo-Mullen E.E., Maio A., Mukherjee S., Bandlamudi C., Shia J., Kemel Y., Cadoo K.A., Liu Y., Carlo M., Ranganathan M., Kane S., Srinivasan P., Chavan S.S., Donoghue M.T.A., Bourque C., Sheehan M., Tejada P.R., Patel Z., Arnold A.G., Kennedy J.A., Amoroso K., Breen K., Catchings A., Sacca R., Marcell V., Markowitz A.J., Latham A., Walsh M., Misyura M., Ceyhan-Birsoy O., Solit D.B., Berger M.F., Robson M.E., Taylor B.S., Offit K., Mandelker D., Stadler Z.K. Prevalence and Characterization of Biallelic and Monoallelic NTHL1 and MSH3 Variant Carriers From a Pan-Cancer Patient Population. JCO Precis Oncol. 2021; 5: P.O.20.00443. doi: 10.1200/P.O.20.00443.

44. Koi M., Leach B.H., McGee S., Tseng-Rogenski S.S., Burke C.A., Carethers J.M. Compound heterozygous MSH3 germline variants and associated tumor somatic DNA mismatch repair dysfunction. N.PJ Precis Oncol. 2024; 8(1): 12. doi: 10.1038/s41698-024-00511-2.

45. Olkinuora A., Nieminen T.T., Mårtensson E., Rohlin A., Ristimäki A., Koskenvuo L., Lepistö A.; Swedish Extended Genetic Analysis of Colorectal Neoplasia (SWEN) Study Group; Gebre-Medhin S., Nordling M., Peltomäki P. Biallelic germline nonsense variant of MLH3 underlies polyposis predisposition. Genet Med. 2019; 21(8): 1868–73. doi: 10.1038/s41436-018-0405-x.

46. Ambrosini M., Rousseau B., Manca P., Artz O., Marabelle A., André T., Maddalena G., Mazzoli G., Intini R., Cohen R., Cercek A., Segal N.H., Saltz L., Varghese A.M., Yaeger R., Nusrat M., Goldberg Z., Ku G.Y., El Dika I., Margalit O., Grinshpun A., Murtaza Kasi P., Schilsky R., Lutfi A., Shacham-Shmueli E., Khan Afghan M., Weiss L., Westphalen C.B., Conca V., Decker B., Randon G., Elez E., Fakih M., Schrock A.B., Cremolini C., Jayachandran P., Overman M.J., Lonardi S., Pietrantonio F. Immune checkpoint inhibitors for POLE or POLD1 proofreading-deficient metastatic colorectal cancer. Ann Oncol. 2024; 35(7): 643–55. doi: 10.1016/j.annonc.2024.03.009.

47. Palles C., Martin L., Domingo E., Chegwidden L., McGuire J., Cuthill V., Heitzer E.; CORGI Consortium; Kerr R., Kerr D., Kearsey S., Clark S.K., Tomlinson I., Latchford A. The clinical features of polymerase proof-reading associated polyposis (PPAP) and recommendations for patient management. Fam Cancer. 2022; 21(2): 197–209. doi: 10.1007/s10689-021-00256-y.

48. Mur P., Viana-Errasti J., García-Mulero S., Magraner-Pardo L., Muñoz I.G., Pons T., Capellá G., Pineda M., Feliubadaló L., Valle L. Recommendations for the classification of germline variants in the exonuclease domain of POLE and POLD1.Genome Med. 2023; 15(1): 85. doi: 10.1186/s13073-023-01234-y.

49. Hühns M., Nürnberg S., Kandashwamy K.K., Maletzki C., Bauer P., Prall F. High mutational burden in colorectal carcinomas with monoallelic POLE mutations: absence of allelic loss and gene promoter methylation. Mod Pathol. 2020; 33(6): 1220–31. doi: 10.1038/s41379-019-0430-6.

50. Andrianova M.A., Seplyarskiy V.B., Terradas M., Sánchez-Heras A.B., Mur P., Soto J.L., Aiza G., Borràs E., Kondrashov F.A., Kondrashov A.S., Bazykin G.A., Valle L. Discovery of recessive effect of human polymerase delta proofreading deficiency through mutational analysis of POLD1mutated normal and cancer cells. Eur J Hum Genet. 2024; 32(7): 837–45. doi: 10.1038/s41431-024-01598-8.

51. Haradhvala N.J., Kim J., Maruvka Y.E., Polak P., Rosebrock D., Livitz D., Hess J.M., Leshchiner I., Kamburov A., Mouw K.W., Lawrence M.S., Getz G. Distinct mutational signatures characterize concurrent loss of polymerase proofreading and mismatch repair. Nat Commun. 2018; 9(1): 1746. doi: 10.1038/s41467-018-04002-4.

52. Robinson P.S., Coorens T.H.H., Palles C., Mitchell E., Abascal F., Olafsson S., Lee B.C.H., Lawson A.R.J., Lee-Six H., Moore L., Sanders M.A., Hewinson J., Martin L., Pinna C.M.A., Galavotti S., Rahbari R., Campbell P.J., Martincorena I., Tomlinson I., Stratton M.R. Increased somatic mutation burdens in normal human cells due to defective DNA polymerases. Nat Genet. 2021; 53(10): 1434–42. doi: 10.1038/s41588-02100930-y.

53. Buchanan D.D., Stewart J.R., Clendenning M., Rosty C., Mahmood K., Pope B.J., Jenkins M.A., Hopper J.L., Southey M.C., Macrae F.A., Winship I.M., Win A.K. Risk of colorectal cancer for carriers of a germ-line mutation in POLE or POLD1. Genet Med. 2018; 20(8): 890–95. doi: 10.1038/gim.2017.185.

54. Sehested A., Meade J., Scheie D., Østrup O., Bertelsen B., Misiakou M.A., Sarosiek T., Kessler E., Melchior L.C., Munch-Petersen H.F., Pai R.K., Schmuth M., Gottschling H., Zschocke J., Gallon R., Wimmer K. Constitutional POLE variants causing a phenotype reminiscent of constitutional mismatch repair deficiency. Hum Mutat. 2022; 43(1): 85–96. doi: 10.1002/humu.24299.

55. Yan H.H.N., Lai J.C.W., Ho S.L., Leung W.K., Law W.L., Lee J.F.Y., Chan A.K.W., Tsui W.Y., Chan A.S.Y., Lee B.C.H., Yue S.S.K., Man A.H.Y., Clevers H., Yuen S.T., Leung S.Y. RNF43 germline and somatic mutation in serrated neoplasia pathway and its association with BRAF mutation. Gut. 2017; 66(9): 1645–56. doi: 10.1136/gutjnl-2016-311849.

56. Carballal S., Balaguer F., IJspeert J.E.G. Serrated polyposis syndrome; epidemiology and management. Best Pract Res Clin Gastroenterol. 2022; 58–59: 101791. doi: 10.1016/j.bpg.2022.101791.

57. Chan J.M., Clendenning M., Joseland S., Georgeson P., Mahmood K., Joo J.E., Walker R., Como J., Preston S., Chai S.M., Chu Y.L., Meyers A.L., Pope B.J., Duggan D., Fink J.L., Macrae F.A., Rosty C., Winship I.M., Jenkins M.A., Buchanan D.D. Inherited BRCA1 and RNF43 pathogenic variants in a familial colorectal cancer type X family. Fam Cancer. 2024; 23(1): 9–21. doi: 10.1007/s10689-023-00351-2.

58. Brinch H.H., Byrjalsen A., Lohse Z., Rasmussen A.Ø., Karstensen J.G., Kristiansen B.S., Jelsig A.M. Germline pathogenic variants in RNF43 in patients with and without serrated polyposis syndrome. Fam Cancer. 2024; 24(1): 3. doi: 10.1007/s10689-024-00428-6.

59. Murphy A., Solomons J., Risby P., Gabriel J., Bedenham T., Johnson M., Atkinson N., Bailey A.A., Bird-Lieberman E., Leedham S.J., East J.E., Biswas S. Germline variant testing in serrated polyposis syndrome. J Gastroenterol Hepatol. 2022; 37(5): 861–69. doi: 10.1111/jgh.15791.

60. Chen H.Y., Jin X.W., Li B.R., Zhu M., Li J., Mao G.P., Zhang Y.F., Ning S.B. Cancer risk in patients with Peutz-Jeghers syndrome: A retrospective cohort study of 336 cases. Tumour Biol. 2017; 39(6): 1010428317705131. doi: 10.1177/1010428317705131.

61. Yehia L., Heald B., Eng C. Clinical Spectrum and Science Behind the Hamartomatous Polyposis Syndromes. Gastroenterology. 2023; 164(5): 800–811. doi: 10.1053/j.gastro.2023.01.026.

62. Taylor H., Yerlioglu D., Phen C., Ballauff A., Nedelkopoulou N., Spier I., Loverdos I., Busoni V.B., Heise J., Dale P., de Meij T., Sweet K., Cohen M.C., Fox V.L., Mas E., Aretz S., Eng C., Buderus S., Thomson M., Rojas I., Uhlig H.H. mTOR inhibitors reduce enteropathy, intestinal bleeding and colectomy rate in patients with juvenile polyposis of infancy with PTEN-BMPR1A deletion. Hum Mol Genet. 2021; 30(14): 1273–82. doi: 10.1093/hmg/ddab094.

63. Laitman Y., Jaeger E., Katz L., Tomlinson I., Friedman E. GREM1 germline mutation screening in Ashkenazi Jewish patients with familial colorectal cancer. Genet Res (Camb). 2015; 97: e11. doi: 10.1017/s0016672315000105.

64. Kim B.G., Li C., Qiao W., Mamura M., Kasprzak B., Anver M., Wolfraim L., Hong S., Mushinski E., Potter M., Kim S.J., Fu X.Y., Deng C., Letterio J.J. Smad4 signalling in T cells is required for suppression of gastrointestinal cancer. Nature. 2006; 441(7096): 1015–19. doi: 10.1038/nature04846.

65. Hahn J.N., Falck V.G., Jirik F.R. Smad4 deficiency in T cells leads to the Th17-associated development of premalignant gastroduodenal lesions in mice. J Clin Invest. 2011; 121(10): 4030–42. doi: 10.1172/J.CI45114.

66. Nieminen T.T., Abdel-Rahman W.M., Ristimäki A., Lappalainen M., Lahermo P., Mecklin J.P., Järvinen H.J., Peltomäki P. BMPR1A mutations in hereditary nonpolyposis colorectal cancer without mismatch repair deficiency. Gastroenterology. 2011; 141(1): e23–6. doi: 10.1053/j.gastro.2011.03.063.

67. Nieminen T.T., O’Donohue M.F., Wu Y., Lohi H., Scherer S.W., Paterson A.D., Ellonen P., Abdel-Rahman W.M., Valo S., Mecklin J.P., Järvinen H.J., Gleizes P.E., Peltomäki P. Germline mutation of RPS20, encoding a ribosomal protein, causes predisposition to hereditary nonpolyposis colorectal carcinoma without DNA mismatch repair deficiency. Gastroenterology. 2014; 147(3): 595–98.e5. doi: 10.1053/j.gastro.2014.06.009.

68. Guda K., Moinova H., He J., Jamison O., Ravi L., Natale L., Lutterbaugh J., Lawrence E., Lewis S., Willson J.K., Lowe J.B., Wiesner G.L., Parmigiani G., Barnholtz-Sloan J., Dawson D.W., Velculescu V.E., Kinzler K.W., Papadopoulos N., Vogelstein B., Willis J., Gerken T.A., Markowitz S.D. Inactivating germ-line and somatic mutations in polypeptide Nacetylgalactosaminyltransferase 12 in human colon cancers. Proc Natl Acad Sci U S A. 2009; 106(31): 12921–25. doi: 10.1073/pnas.0901454106.

69. Evans D.R., Venkitachalam S., Revoredo L., Dohey A.T., Clarke E., Pennell J.J., Powell A.E., Quinn E., Ravi L., Gerken T.A., Green J.S., Woods M.O., Guda K. Evidence for GALNT12 as a moderate penetrance gene for colorectal cancer. Hum Mutat. 2018; 39(8): 1092–1101. doi: 10.1002/humu.23549.

70. Belhadj S., Terradas M., Munoz-Torres P.M., Aiza G., Navarro M., Capellá G., Valle L. Candidate genes for hereditary colorectal cancer: Mutational screening and systematic review. Hum Mutat. 2020; 41(9): 1563–76. doi: 10.1002/humu.24057.

71. Feng Z., Yang X., Tian M., Zeng N., Bai Z., Deng W., Zhao Y., Guo J., Yang Y., Zhang Z., Yang Y. BRCA genes as candidates for colorectal cancer genetic testing panel: systematic review and meta-analysis. BMC Cancer. 2023; 23(1): 807. doi: 10.1186/s12885-023-11328-w.

72. Хабибуллина Л.Р., Щербакова О.В., Шубин В.П., Разумовский А.Ю., Цуканов А.С. Особенности генетико-фенотипической корреляции у детей с аденоматозным полипозным синдромом. Колопроктология. 2024; 23(3): 79–86. doi: 10.33878/2073-7556-2024-23-379-86. EDN: IKNVQE.

73. Yanus G.A., Akhapkina T.A., Ivantsov A.O., Preobrazhenskaya E.V., Aleksakhina S.N., Bizin I.V., Sokolenko A.P., Mitiushkina N.V., Kuligina E.S., Suspitsin E.N., Venina A.R., Holmatov M.M., Zaitseva O.A., Yatsuk O.S., Pashkov D.V., Belyaev A.M., Togo A.V., Imyanitov E.N., Iyevleva A.G. Spectrum of APC and MUTYH germ-line mutations in Russian patients with colorectal malignancies. Clin Genet. 2018; 93(5): 1015–21. doi: 10.1111/cge.13228.

74. Yanus G.A., Akhapkina T.A., Iyevleva A.G., Kornilov A.V., Suspitsin E.N., Kuligina E.S., Ivantsov A.O., Aleksakhina S.N., Sokolova T.N., Sokolenko A.P., Togo A.V., Imyanitov E.N. The spectrum of Lynch syndrome-associated germ-line mutations in Russia. Eur J Med Genet. 2020; 63(3): 103753. doi: 10.1016/j.ejmg.2019.103753.

75. Tsukanov A.S., Barinov A.A., Shubin V.P., Loginova A.N., Pikunov D.Yu., Shakhmatov D.G., Shelygin Yu.A., Achkasov S.I. Germline variants of the MMR/EPCAM genes in Russian patients with Lynch syndrome. Russian Open Medical Journal. 2024; 13(3): 308. doi: 10.15275/rusomj.2024.0308.

76. Логинова А.Н., Шелыгин Ю.А., Шубин В.П., Кузьминов А.М., Пикунов Д.Ю., Савельева Т.А., Цуканов А.С. Протяженные перестройки в генах, ответственных за развитие семейного аденоматоза толстой кишки, MUTYH-ассоциированного полипоза и синдрома ПейтцаЕгерса у российских пациентов. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2023; 33(1): 59–67. doi: 10.22416/1382-4376-2023-33-1-59-67 EDN: AIMNPR.

77. Тобоева М.Х., Пикунов Д.Ю., Цуканов А.С., Фролов С.А. Клинико-генетические особенности у пациентов с MutYH-ассоциированным полипозом в российской популяции. Вопросы онкологии. 2020; 66(6): 673–78. doi: 10.37469/0507-3758-2020-66-6-673-678. EDN: DQYXLI.

78. Савельева Т.А., Пономаренко А.А., Шелыгин Ю.А., Кузьминов А.М., Вышегородцев Д.В., Логинова А.Н., Пикунов Д.Ю., Гончарова Е.П., Ликутов А.А., Майновская О.А., Цуканов А.С. Течение и клинические проявления синдрома Пейтца-Егерса в российской популяции. Терапевтический архив. 2023; 95(2): 145–51. doi: 10.26442/00403660.2023.02.202059. EDN: JXMXUH.

79. Шубин В.П., Пикунов Д.Ю., Логинова А.Н., Баринов А.А., Шелыгин Ю.А., Цуканов А.С. Роль молекулярно-генетического исследования в диагностике наследственного полипозного синдрома. Якутский медицинский журнал. 2023; (2): 49–52. doi: 10.25789/YMJ.2023.82.12. EDN: CMPYWA.


Рецензия

Для цитирования:


Янус Г.А., Иевлева А.Г., Малыгин А.Ю., Суспицын Е.Н., Алексахина С.Н., Имянитов Е.Н. Моногенная предрасположенность к развитию колоректального рака: особенности канцерогенеза и трансляционные аспекты. Сибирский онкологический журнал. 2025;24(5):113-127. https://doi.org/10.21294/1814-4861-2025-24-5-113-127

For citation:


Yanus G.A., Iyevleva A.G., Malygin A.Yu., Suspitsin E.N., Aleksakhina S.N., Imyanitov E.N. Monogenic predisposition to colorectal cancer: features of carcinogenesis and translational aspects. Siberian journal of oncology. 2025;24(5):113-127. (In Russ.) https://doi.org/10.21294/1814-4861-2025-24-5-113-127

Просмотров: 3


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1814-4861 (Print)
ISSN 2312-3168 (Online)