Preview

Сибирский онкологический журнал

Расширенный поиск

Коэкспрессия длинных некодирующих РНК MALAT1, HOTAIR, PVT1 с провоспалительными цитокинами в формировании платинорезистентного фенотипа при раке яичников

https://doi.org/10.21294/1814-4861-2026-25-1-85-94

Аннотация

Введение. Экспрессия основных медиаторов воспалительного сигналинга – цитокинов и длинных некодирующих РНК (днРНК) – играет значительную роль в течении опухолевого процесса и формировании платинорезистентного фенотипа рака яичников (РЯ).
Цель исследования – оценить коэкспрессию длинных некодирующих РНК HOTAIR, MALAT1, PVT1 с провоспалительными цитокинами в плазме крови как признак возможного формирования платинорезистентного фенотипа рака яичников.
Материал и методы. В исследование включено 46 пациенток с первичным раком яичников, проходивших лечение в Ульяновском онкологическом диспансере в 2018–21 гг., и 12 пациенток с доброкачественными опухолями яичников (группа сравнения). Из 2 мл плазмы крови пациенток до начала лечения выделяли РНК с последующими обратной транскрипцией и полимеразной цепной реакцией для анализа экспрессии HOTAIR, MALAT1, PVT1. В плазме крови также определяли уровни цитокинов IL-1β, -10, -17A, -18. Пациентки c РЯ были разделены на 2 группы по продолжительности бесплатинового интервала.
Результаты. Установлено, что экспрессия в плазме длинных некодирующих РНК HOTAIR, MALAT1, PVT1 у больных раком яичников значимо выше, чем в плазме у пациенток с доброкачественными опухолями яичников. Экспрессия HOTAIR в плазме крови также была выше при раке яичников III–IV стадии, чем при РЯ I–II стадии. У пациенток с платинорезистентным раком яичников был значимо ниже уровень IL-17A и IL-10 по сравнению с группой сравнения, но выше IL-1β и IL-10, чем у больных платиночувствительным РЯ. Установлена корреляция между экспрессией днРНК MALAT1 и уровнем цитокина IL-18 в сыворотке крови.
Заключение. Уровень экспрессии днРНК PVT1 в сыворотке крови пациенток с РЯ коррелирует со временем выживания без прогрессирования и позволяет оценить вероятность рецидива заболевания. Сочетанный уровень коэкспрессии днРНК MALAT1 и IL-18 в сыворотке крови может быть использован как предиктивный маркер для выявления платинорезистентного РЯ, а их сочетанная гиперэкспрессия с провоспалительными цитокинами до начала химиотерапии обладает прогностическим потенциалом маркера платинорезистентности рака яичников. В модель оценки риска прогрессирования РЯ в первые 6 мес от постановки диагноза включены данные экспрессии MALAT1 и HOTAIR и сывороточные уровни IL-1β, -18 до начала терапии, при этом значение коэффициента (К) выше 1,65 свидетельствует о высоком риске прогрессирования заболевания.

Об авторах

Д. Р. Долгова
ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет»
Россия

Долгова Динара Ришатовна, кандидат биологических наук, доцент, доцент кафедры физиологии и патофизиологии, Институт медицины, экологии и физической культуры 
Researcher ID (WOS): А-8492-2014. Author ID (Scopus): 55378365200

432017, г. Ульяновск, ул. Льва Толстого, 42



С. О. Генинг
ООО «Лучи Здоровье»
Россия

Генинг Снежанна Олеговна, кандидат медицинских наук, онколог 
Researcher ID (WOS): ABA-6267-2020. Author ID (Scopus): 55151451500 

121205, г. Москва, ул. Нобеля, 7



И. И. Антонеева
ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет»; ГУЗ «Областной клинический онкологический диспансер»
Россия

Антонеева Инна Ивановна, доктор медицинских наук, профессор, профессор кафедры физиологии и патофизиологии, Институт медицины, экологии и физической культуры; врач 
Researcher ID (WOS): А-8185-2014. Author ID (Scopus): 6504605612 

432017, г. Ульяновск, ул. Льва Толстого, 42;
432017, г. Ульяновск, ул. 12 Сентября, 90



Т. В. Абакумова
ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет»
Россия

Абакумова Татьяна Владимировна, доктор биологических наук, доцент, профессор кафедры физиологии и патофизиологии, Институт медицины, экологии и физической культуры 
Researcher ID (WOS): HJA-7814-2022. Author ID (Scopus): 37103623900 

432017, г. Ульяновск, ул. Льва Толстого, 42



И. Р. Мягдиева
ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет»
Россия

Мягдиева Ильсея Ринатовна, старший преподаватель кафедры физиологии и патофизиологии, Институт медицины, экологии и физической культуры 
Researcher ID (WOS): E-8062-2017. Author ID (Scopus): 58249336400 

432017, г. Ульяновск, ул. Льва Толстого, 42



Т. П. Генинг
ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет»
Россия

Генинг Татьяна Петровна, доктор биологических наук, профессор, заведующая кафедрой физиологии и патофизиологии, Институт медицины, экологии и физической культуры 
Researcher ID (WOS): A-8486-2014. Author ID (Scopus): 6507217338. 

432017, г. Ульяновск, ул. Льва Толстого, 42



Нирмала Дарвин Снеха
ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный университет»
Россия

Дарвин Нирмала Снеха, студентка 3-го курса медицинского факультета специальности «Лечебное дело» 

432017, г. Ульяновск, ул. Льва Толстого, 42



Список литературы

1. Zhu B., Gu H., Mao Z., Beeraka N.M., Zhao X., Anand M.P., Zheng Y., Zhao R., Li S., Manogaran P., Fan R., Nikolenko V.N., Wen H., Basappa B., Liu J. Global burden of gynaecological cancers in 2022 and projections to 2050. J Glob Health. 2024; 14: 04155. doi: 10.7189/jogh.14.04155.

2. Havasi A., Cainap S.S., Havasi A.T., Cainap C. Ovarian CancerInsights into Platinum Resistance and Overcoming It. Medicina (Kaunas). 2023; 59(3): 544. doi: 10.3390/medicina59030544.

3. Gosia M., Doshi G., Parab S., Godad A. Long Non-Coding, Micro, and Circular RNAs in Ovarian Cancer Metastasis: Pathways and Treatment Approaches. Reprod Sci. 2025; 32(9): 2842–63. doi: 10.1007/s43032-025-01948-x.

4. Wang J., Zhang X., Chen W., Hu X., Li J., Liu C. Regulatory roles of long noncoding RNAs implicated in cancer hallmarks. Int J Cancer. 2020; 146(4): 906–16. doi: 10.1002/ijc.32277.

5. Ma S., Long T., Huang W.J.M. Noncoding RNAs in infammation and colorectal cancer. RNA Biol. 2020; 17(11): 1628–35. doi: 10.1080/15476286.2019.1705610.

6. Franco P.I.R., Neto J.R.D.C., de Menezes L.B., Machado J.R., Miguel M.P. Revisiting the hallmarks of cancer: A new look at long noncoding RNAs in breast cancer. Pathol Res Pract. 2023; 243: 154381. doi: 10.1016/j.prp.2023.154381.

7. Santiago A.E., Paula S.O.C., Carvalho A.T., Cândido E.B., Furtado R.S., Silva Filho A.L.D. Systemic Infammatory Patterns in Ovarian Cancer Patients: Analysis of Cytokines, Chemokines, and Microparticles. Rev Bras Ginecol Obstet. 2023; 45(12): e780–89. doi: 10.1055/s-0043-1772590.

8. Price R.L., Bhan A., Mandal S.S. HOTAIR beyond repression: In protein degradation, infammation, DNA damage response, and cell signaling. DNA Repair (Amst). 2021; 105: 103141. doi: 10.1016/j.dnarep.2021.103141.

9. Fan L., Lei H., Lin Y., Zhou Z., Li J., Wu A., Shu G., Roger S., Yin G. Hotair promotes the migration and proliferation in ovarian cancer by miR222-3p/CDK19 axis. Cell Mol Life Sci. 2022; 79(5): 254. doi: 10.1007/s00018-022-04250-0.

10. Clack K., Soda N., Kasetsirikul S., Kline R., Salomon C., Shiddiky M.J.A. An Interfacial Afnity Interaction-Based Method for Detecting HOTAIR lncRNA in Cancer Plasma Samples. Biosensors (Basel). 2022; 12(5): 287. doi: 10.3390/bios12050287.

11. Wang W., Fang F., Ozes A., Nephew K.P. Targeting Ovarian Cancer Stem Cells by Dual Inhibition of HOTAIR and DNA Methylation. Mol Cancer Ther. 2021; 20(6): 1092–1101. doi: 10.1158/1535-7163.MCT-20-0826.

12. Khalaf S.E., Abdelfattah S.N., Hasona N.A. Crosstalk Between Long Non-coding RNA MALAT1, miRNA-181a, and IL-17 in Cirrhotic Patients and Their Possible Correlation SIRT1/NF-Ƙβ Axis. Indian J Clin Biochem. 2025; 40(4): 660–67. doi: 10.1007/s12291-024-01203-1.

13. Zhou Y., Li X., Duan Y., Luo Y., Tang S., Wang J. LncRNA MALAT-1 regulates the growth of interleukin-22-stimulated keratinocytes via the miR-330-5p/S100A7 axis. Autoimmunity. 2022; 55(1): 32–42. doi: 10.1080/08916934.2021.2001802.

14. Qiu J.J., Lin X.J., Tang X.Y., Zheng T.T., Lin Y.Y., Hua K.Q. Exosomal Metastasis-Associated Lung Adenocarcinoma Transcript 1 Promotes Angiogenesis and Predicts Poor Prognosis in Epithelial Ovarian Cancer. Int J Biol Sci. 2018; 14(14): 1960–73. doi: 10.7150/ijbs.28048.

15. Chen Q., Su Y., He X., Zhao W., Wu C., Zhang W., Si X., Dong B., Zhao L., Gao Y., Yang X., Chen J., Lu J., Qiao X., Zhang Y. Plasma long non-coding RNA MALAT1 is associated with distant metastasis in patients with epithelial ovarian cancer. Oncol Lett. 2016 12(2): 1361–66. doi: 10.3892/ol.2016.4800.

16. Tabury K., Monavarian M., Listik E., Shelton A.K., Choi A.S., Quintens R., Arend R.C., Hempel N., Miller C.R., Györrfy B., Mythreye K. PVT1 is a stress-responsive lncRNA that drives ovarian cancer metastasis and chemoresistance. Life Sci Alliance. 2022; 5(11): e202201370. doi: 10.26508/lsa.202201370.

17. Senga S.S., Grose R.P. Hallmarks of cancer – the new testament. Open Biol. 2021; 11(1): 200358. doi: 10.1098/rsob.200358.

18. D’Alterio C., Scala S., Sozzi G., Roz L., Bertolini G. Paradoxical efects of chemotherapy on tumor relapse and metastasis promotion. Semin Cancer Biol. 2020; 60: 351–61. doi:10.1016/j.semcancer.2019.08.019.

19. Jordan K.R., Sikora M.J., Slansky J.E., Minic A., Richer J.K., Moroney M.R., Hu J., Wolsky R.J., Watson Z.L., Yamamoto T.M., Costello J.C., Clauset A., Behbakht K., Kumar T.R., Bitler B.G. The Capacity of the Ovarian Cancer Tumor Microenvironment to Integrate Infammation Signaling Conveys a Shorter Disease-free Interval. Clin Cancer Res. 2020; 26(23): 6362–73. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-20-1762.

20. Mazzoldi E.L., Pastò A., Pilotto G., Minuzzo S., Piga I., Palumbo P., Carella M., Frezzini S., Nicoletto M.O., Amadori A., Indraccolo S. Comparison of the Genomic Profle of Cancer Stem Cells and Their Non-Stem Counterpart: The Case of Ovarian Cancer. J Clin Med. 2020; 9(2): 368. doi: 10.3390/jcm9020368.

21. Berraondo P., Cuesta R., Aranda F., Martinez-Riaño A., EgurenSantamaria I., Luri-Rey C., Risson A, Melero A., Gomis G., Melero I. Immunocytokines and cytokine neutralization for cancer immunotherapy. Trends Cancer. 2025; 11(8): 790–805. doi: 10.1016/j.trecan.2025.04.014.

22. Propper D.J., Balkwill F.R. Harnessing cytokines and chemokines for cancer therapy. Nat Rev Clin Oncol. 2022; 19(4): 237–53. doi: 10.1038/s41571-021-00588-9.

23. Wang Y., Lin A., Liu Z., Cheng Q., Zhang J., Luo P. Tumor Microenvironment Onmyoji: Cytokines with Dual Protumor and Antitumor Roles. Cancer Commun (Lond). 2026; 46: 0008. doi: 10.34133/cancomm.0008.

24. Li L., Yu R., Cai T., Chen Z., Lan M., Zou T., Wang B., Wang Q., Zhao Y., Cai Y. Efects of immune cells and cytokines on infammation and immunosuppression in the tumor microenvironment. Int Immunopharmacol. 2020; 88: 106939. doi: 10.1016/j.intimp.2020.106939.

25. Al-Kadhimi Z., Callahan M., Fehniger T., Cole K.E., Vose J., Hinrichs S. Enrichment of innate immune cells from PBMC followed by triple cytokine activation for adoptive immunotherapy. Int Immunopharmacol. 2022; 113(Pt A): 109387. doi: 10.1016/j.intimp.2022.109387.

26. Yasuda K., Nakanishi K., Tsutsui H. Interleukin-18 in Health and Disease. Int J Mol Sci. 2019; 20(3): 649. doi: 10.3390/ijms20030649.

27. Kaplanski G. Interleukin-18: Biological properties and role in disease pathogenesis. Immunol Rev. 2018; 281(1): 138–53. doi: 10.1111/imr.12616.

28. Hoover A.A., Hufnagel D.H., Harris W., Bullock K., Glass E.B., Liu E., Barham W., Crispens M.A., Khabele D., Giorgio T.D., Wilson A.J., Yull F.E. Increased canonical NF-kappaB signaling specifcally in macrophages is sufcient to limit tumor progression in syngeneic murine models of ovarian cancer. BMC Cancer. 2020; 20(1): 970. doi: 10.1186/s12885-020-07450-8.

29. McGeachy M.J., Cua D.J., Gaffen S.L. The IL-17 Family of Cytokines in Health and Disease. Immunity. 2019; 50(4): 892–906. doi: 10.1016/j.immuni.2019.03.021.

30. Тюляндин С.А., Коломиец Л.А., Морхов К.Ю., Нечушкина В.М., Покатаев И.А., Тюляндина А.С., Урманчеева А.Ф., Хохлова С.В. Практические рекомендации по лекарственному лечению рака яичников, первичного рака брюшины и рака маточных труб. Злокачественные опухоли: Практические рекомендации RUSSCO. 2018; 8(3s2): 145–55. doi: 10.18027/2224-5057-2018-8-3s2-145-155. EDN: GHFCFO.

31. Stuart G.C., Kitchener H., Bacon M., duBois A., Friedlander M., Ledermann J Marth C., Thigpen T., Trimble E; participants of 4th Ovarian Cancer Consensus Conference (OCCC); Gynecologic Cancer Intergroup. 2010 Gynecologic Cancer InterGroup (GCIG) consensus statement on clinical trials in ovarian cancer: report from the Fourth Ovarian Cancer Consensus Conference. Int J Gynecol Cancer. 2011; 21(4): 750–55. doi: 10.1097/IGC.0b013e31821b2568.

32. Livak K.J., Schmittgen T.D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method. Methods. 2001; 25(4): 402–408. doi: 10.1006/meth.2001.1262.

33. Генинг С.О., Абакумова Т.В., Долгова Д.Р., Антонеева И.И., Генинг Т.П., Колодий И.О. Провоспалительные цитокины и циркулирующие опухолевые клетки у больных раком яичников на фоне платиносодержащей химиотерапии. Вопросы онкологии. 2021; 67(6): 804–14. doi: 10.37469/0507-3758-2021-67-6-804-814. EDN: UHYGCJ.

34. Savant S.S., Sriramkumar S., O’Hagan H.M. The Role of Infammation and Infammatory Mediators in the Development, Progression, Metastasis, and Chemoresistance of Epithelial Ovarian Cancer. Cancers (Basel). 2018; 10(8): 251. doi: 10.3390/cancers10080251.

35. Bhat A.A., Nisar S., Singh M., Ashraf B., Masoodi T., Prasad C.P., Sharma A., Maacha S., Karedath T., Hashem S., Yasin S.B., Bagga P., Reddy R., Frennaux M.P., Uddin S., Dhawan P., Haris M., Macha M.A. Cytokine- and chemokine-induced infammatory colorectal tumor microenvironment: Emerging avenue for targeted therapy. Cancer Commun (Lond). 2022; 42(8): 689–715. doi: 10.1002/cac2.12295.

36. Pereira-Veiga T., Schneegans S., Pantel K., Wikman H. Circulating tumor cell-blood cell crosstalk: Biology and clinical relevance. Cell Rep. 2022; 40(9): 111298. doi: 10.1016/j.celrep.2022.111298.

37. Samidurai A., Olex A.L., Ockaili R., Kraskauskas D., Roh S.K., Kukreja R.C., Das A. Integrated Analysis of lncRNA-miRNA-mRNA Regulatory Network in Rapamycin-Induced Cardioprotection against Ischemia/Reperfusion Injury in Diabetic Rabbits. Cells. 2023; 12(24): 2820. doi: 10.3390/cells12242820.

38. Gutierrez-Cruz J.A., Maldonado V., Melendez-Zajgla J. Regulation of the Cancer Stem Phenotype by Long Non-Coding RNAs. Cells. 2022; 11(15): 2352. doi: 10.3390/cells11152352.

39. Dong L., Wang H., Gao Y., Wang S., Wang W. Long non-coding RNA PVT1 promotes the proliferation, migration and EMT process of ovarian cancer cells by regulating CTGF. Oncol Lett. 2022; 25(2): 71. doi: 10.3892/ol.2022.13657.


Дополнительные файлы

1. Рис. 1. Кривая времени без прогрессирования у больных раком яичников в зависимости от экспрессии PVT1 в плазме крови (cut point=2,98) (Log-rank=0,015). Примечание: рисунок выполнен авторами
Тема
Тип Прочее
Посмотреть (72KB)    
Метаданные ▾
2. Рис. 2. ROC-кривая зависимости возникновения прогрессирования/рецидива рака яичников от экспрессии PVT1 в плазме крови. Примечание: рисунок выполнен авторами
Тема
Тип Прочее
Посмотреть (127KB)    
Метаданные ▾

Рецензия

Для цитирования:


Долгова Д.Р., Генинг С.О., Антонеева И.И., Абакумова Т.В., Мягдиева И.Р., Генинг Т.П., Снеха Н. Коэкспрессия длинных некодирующих РНК MALAT1, HOTAIR, PVT1 с провоспалительными цитокинами в формировании платинорезистентного фенотипа при раке яичников. Сибирский онкологический журнал. 2026;25(1):85-94. https://doi.org/10.21294/1814-4861-2026-25-1-85-94

For citation:


Dolgova D.R., Gening S.O., Antoneeva I.I., Abakumova T.V., Myagdieva I.R., Gening T.P., Sneha N. Coexpression of lncRNAs MALAT1, HOTAIR and PVT1 with pro-infammatory cytokines in the formation of a platinum-resistant phenotype of ovarian cancer. Siberian journal of oncology. 2026;25(1):85-94. (In Russ.) https://doi.org/10.21294/1814-4861-2026-25-1-85-94

Просмотров: 213

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1814-4861 (Print)
ISSN 2312-3168 (Online)