РАКОВЫЕ ТЕСТИКУЛЯРНЫЕ АНТИГЕНЫ В ИММУНОТЕРАПИИ ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫХ ОПУХОЛЕЙ
Аннотация
Низкая токсичность, онкоспецифичность, иммуногенность и относительно частая экспрессия во многих типах рака СТ-антигенов послужили основанием для их использования в иммунотерапии онкологических заболеваний. В настоящем обзоре представлены данные использования СТ-антигенов в новых клинических подходах контроля злокачественного процесса, развитых из представлений о механизмах противоопухолевого иммунитета. В частности, освещены результаты применения ингибиторов иммунных контрольных точек, коррекции иммунного ответа извне путем вакцинации культивированными ex vivo дендритными клетками, натуральными киллерами, Т-лимфоцитами; индукции и синхронизации экспрессии СТА с помощью ДНК гипометилирующих агентов для повышения иммуногенности раковых клеток и др. В итоге демонстрируется необходимость переосмысления современных клинических стратегий в отношении как выбора химиотерапевтических агентов, так и дизайна иммунотерапии, что в перспективе существенно повысит эффективность лечения рака.
Об авторах
Д. И. Водолажский
ФГБУ «Ростовский научно-исследовательский онкологический институт» Минздрава России
Россия
Россия
Водолажский Дмитрий Игоревич - кандидат биологических наук, руководитель лаборатории молекулярной онкологии.
344037, г. Ростов-на-Дону, 14-я линия, 63. E-mail: dvodolazhsky@gmail.com. SPIN-код: 6660-5361
О. И. Кит
ФГБУ «Ростовский научно-исследовательский онкологический институт» Минздрава России
Россия
Россия
Кит Олег Иванович - доктор медицинских наук, профессор, директор.
344037, г. Ростов-на-Дону, 14-я линия, 63. SPIN-код: 1728-0329
Х. А. Могушкова
ФГБУ «Ростовский научно-исследовательский онкологический институт» Минздрава России
Россия
Россия
Могушкова Хава Ахметовна, ординатор.
344037, г. Ростов-на-Дону, 14-я линия, 63. E-mail: hava_zanzibar@mail.ru
А. А. Пушкин
ФГБУ «Ростовский научно-исследовательский онкологический институт» Минздрава России
Россия
Россия
Пушкин Антон Андреевич - младший научный сотрудник лаборатории молекулярной онкологии, ФГБУ «Ростовский научноисследовательский онкологический институт»
344037, г. Ростов-на-Дону, 14-я линия, 63. E-mail: cellculture.rnioi@gmail.com
Н. Н. Тимошкина
ФГБУ «Ростовский научно-исследовательский онкологический институт» Минздрава России
Россия
Россия
Тимошкина Наталья Николаевна, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории молекулярной онкологии.
344037, г. Ростов-на-Дону, 14-я линия, 63. E-mail: n_timoshkina@mail.ru. SPIN-код: 9483-4330
Список литературы
1. van der Bruggen P., Traversari C., Chomez P., Lurquin C., De Plaen E., Van den Eynde B., Knuth A., Boon T.A. Gene encoding an antigen recognized by cytolytic T lymphocytes on a human melanoma. Science. 1991; 254 (5038): 1643–7.
2. Old L.J., Chen Y.T. New paths in human cancer serology. J. Exp. Med. 1998; 187: 1163–1167.
3. Almeida L.G., Sakabe N.J., deOliveira A.R., Silva M.C., Mundstein A.S., Cohen T., Chen Y.T., Chua R., Gurung S., Gnjatic S., Jungbluth A.A., Caballero O.L., Bairoch A., Kiesler E., White S.L., Simpson A.J., Old L.J., Camargo A.A., Vasconcelos A.T. CTdatabase: a knowledge-base of high-throughput and curated data on cancer-testis antigens. Nucleic acids research. 2009; 37: 816–819.
4. Brichard V.G., Lejeune D. GSK’s antigen-specific cancer immunotherapy programme: pilot results leading to Phase III clinical development. Vaccine 25 (Suppl. 2). 2007; B61–71.
5. Garg M., Kanojia D., Salhan S., Suri S., Gupta A., Lohiya N.K., Suri A. Sperm-associated antigen 9 is a biomarker for early cervical carcinoma. Cancer. 2009; 115 (12): 2671–2683. doi: 10.1002/cncr.24293.
6. Kanojia D., Garg M., Gupta S., Gupta A., Suri A. Sperm-associated antigen 9 is a novel biomarker for colorectal cancer and is involved in tumor growth and tumorigenicity. Am J Pathol. 2011; 178 (3): 1009–1020. doi: 10.1016/j.ajpath.2010.11.047.
7. Li H., Peng Y., Niu H., Wu B., Zhang Y., Zhang Y., Bai X., He P. SPAG9 is overexpressed in human prostate cancer and promotes cancer cell proliferation. Tumour Biol. 2014; 35 (7): 6949–6954. doi: 10.1007/s13277-014-1947-4.
8. Sinha A., Agarwal S., Parashar D., Verma A., Saini S., Jagadish N., Ansari A.S., Lohiya N.K., Suri A. Down regulation of SPAG9 reduces growth and invasive potential of triple-negative breast cancer cells: possible implications in targeted therapy. J Exp Clin Cancer Res. 2013; 32: 69. doi: 10.1186/1756-9966-32-69.
9. Suri A., Saini S., Sinha A., Agarwal S., Verma A., Parashar D., Singh S., Gupta N., Jagadish N. Cancer testis antigens: A new paradigm for cancer therapy. Oncoimmunology. 2012; 1 (7): 1194–1196. doi:10.4161/onci.20686.
10. Wang Y., Dong Q., Miao Y., Fu L., Lin X., Wang E. Clinical significance and biological roles of SPAG9 overexpression in non-small cell lung cancer. Lung Cancer. 2013; 81 (2): 266–272. doi: 10.1016/j.lungcan.2013.04.021.
11. Xie C., Fu L., Liu N., Li Q. Overexpression of SPAG9 correlates with poor prognosis and tumor progression in hepatocellular carcinoma. Tumour Biol. 2014; 35 (8): 7685–7691. doi: 10.1007/s13277-014-2030-x.
12. Yi F., Ni W., Liu W., Pan X., Han X., Yang L., Kong X., Ma R., Chang R. SPAG9 is overexpressed in human astrocytoma and promotes cell proliferation and invasion. Tumour Biol. 2013; 34 (5): 2849–2855. doi: 10.1007/s13277-013-0845-5.
13. Chen Y.T., Scanlan M.J., Sahin U., Tureci O., Gure A.O., Tsang S., Williamson B., Stockert E., Pfreundschuh M., Old L.J. A testicular antigen aberrantly expressed in human cancers detected by autologous antibody screening. Proc Natl Acad Sci USA. 1998; 94 (5): 1914–1918.
14. Hofmann O., Caballero O.L., Stevenson B.J., Chen Y.T., Cohen T., Chua R., Maher C.A., Panji S., Schaefer U., Kruger A., Lehvaslaiho M., Carninci P., Hayashizaki Y., Jongeneel C.V., Simpson A.J., Old L.J., Hide W. Genome-wide analysis of cancer/testis gene expression. Proc Natl Acad Sci USA. 2008; 105 (51): 20422–20427. doi: 10.1073/pnas.0810777105.
15. Caballero O.L., Chen Y.T. Cancer/testis (CT) antigens: potential targets for immunotherapy. Cancer Sci. 2009 Nov; 100 (11): 2014–21. doi: 10.1111/j.1349-7006.2009.01303.x.
16. Кит О.И., Водолажский Д.И., Могушкова Х.А., Пушкин А.А., Межевова И.В., Тимошкина Н.Н. Механизмы регуляции экспрессии раковых тестикулярных антигенов. Современные проблемы науки и образования. 2016; 5. [Электронный ресурс]. URL: http://www.science-education.ru/article/view?id=25345.
17. Jager E., Chen Y.T., Drijfhout J.W., Karbach J., Ringhoffer M., Jager D., Arand M., Wada H., Noguchi Y., Stockert E., Old L.J., Knuth A. Simultaneous humoral and cellular immune response against cancer-testis antigen NY-ESO-1: definition of human histocompatibility leukocyte antigen (HLA)-A2-binding peptide epitopes. J Exp Med. 1998; 187: 265–270.
18. Kalejs M., Erenpreisa J. Cancer/testis antigens and gametogenesis: a review and “brain-storming” session. Cancer Cell. 2005; 5: 4. doi: 10.1186/1475-2867-5-4.
19. Maio M., Coral S., Sigalotti L., Elisei R., Romei C., Rossi G., Cortini E., Colizzi F., Fenzi G., Altomonte M., Pinchera A., Vitale M. Analysis of cancer/testis antigens in sporadic medullary thyroid carcinoma: expression and humoral response to NY-ESO-1. J. Biol. Chem. 2003; 88: 748-754.
20. Scanlan M.J., Gout I., Gordon C.M., Williamson B., Stockert E., Gure A.O., Jager D., Chen Y.T., Mackay A., O’Hare M.J., Old L.J. Humoral immunity to human breast cancer: antigen definition and quantitative analysis of mRNA expression. Cancer Immun. 2001; 1: 4.
21. Kurashige T., Noguchi Y., Saika T., Ono T., Nagata Y., Jungbluth A., Ritter G., Chen Y.T., Stockert E., Tsushima T., Kumon H., Old L.J., Nakayama E. Ny-ESO-1 expression and immunogenicity associated with transitional cell carcinoma: correlation with tumor grade. Cancer Res. 2001; 61: 4671–4674.
22. Ademuyiwa F.O., Bshara W., Attwood K., Morrison C., Edge S.B., Karpf A.R., James S.A., Ambrosone C.B., O’Connor T.L., Levine E.G., Miliotto A., Ritter E., Ritter G., Gnjatic S., Odunsi K. NY-ESO-1 cancer testis antigen demonstrates high immunogenicity in triple negative breast cancer. PLoS One. 2012; 7 (6): e38783. doi: 10.1371/journal.pone.0038783.
23. Kanojia D., Garg M., Saini S., Agarwal S., Parashar D., Jagadish N., Seth A., Bhatnagar A., Gupta A., Kumar R., Lohiya N.K., Suri A. Sperm associated antigen 9 plays an important role in bladder transitional cell carcinoma. PLoS One. 2013; 8 (12): e81348. doi: 10.1371/journal.pone.0081348.
24. Marchand M., van Baren N., Weynants P., Brichard V., Dreno B., Tessier M.H., Rankin E., Parmiani G., Arienti F., Humblet Y., Bourlond A., Vanwijck R., Lienard D., Beauduin M., Dietrich P.Y., Russo V., Kerger J., Masucci G., Jager E., De Greve J., Atzpodien J., Brasseur F., Coulie P.G., van der B.P., Boon T. Tumor regressions observed in patients with metastatic melanoma treated with an antigenic peptide encoded by gene MAGE-3 and presented by HLA-A1. Int J Cancer. 1999; 80: 219–230.
25. Gati A., Lajmi N., Derouiche A., Marrakchi R., Chebil M., Benammar-Elgaaied A. NY-ESO-1 expression and immunogenicity in prostate cancer patients. Tunis Med. 2011; 89 (10): 779–783.
26. Sonpavde G., Wang M., Peterson L.E., Wang H.Y., Joe T., Mims M.P., Kadmon D., Ittmann M.M., Wheeler T.M., Gee A.P., Wang R.F., Hayes T.G. HLA-restricted NY-ESO-1 peptide immunotherapy for metastatic castration resistant prostate cancer. Investigational new drugs. 2014; 32 (2): 235–242. doi:10.1007/s10637-013-9960-9.
27. Marchand M., Punt C.J., Aamdal S., Escudier B., Kruit W.H., Keilholz U., Hakansson L., van B.N., Humblet Y., Mulders P., Avril M.F., Eggermont A.M., Scheibenbogen C., Uiters J., Wanders J., Delire M., Boon T., Stoter G. Immunisation of metastatic cancer patients with MAGE-3 protein combined with adjuvant SBAS-2: a clinical report. Eur. J. Cancer. 2003; 39: 70–77.
28. Kruit W.H., van Ojik H.H., Brichar V.G., Escudier B., Dorval T., Dreno B., Patel P., van B.N., Avril M.F., Piperno S., Khammari A., Stas M., Ritter G., Lethe B., Godelaine D., Brasseur F., Zhang Y., van der B.P., Boon T., Eggermont A.M., Marchand M. Phase 1/2 study of subcutaneous and intradermal immunization with a recombinant MAGE-3 protein in patients with detectable metastatic melanoma. Int J Cancer. 2005; 117: 596–604.
29. Atanackovic D., Altorki N.K., Stockert E., Williamson B., Jungbluth A.A., Ritter E., Santiago D., Ferrara C.A., Matsuo M., Selvakumar A., Dupont B., Chen Y.T., Hoffman E.W., Ritter G., Old L.J., Gnjatic S. Vaccine induced CD4+ T cell responses to MAGE-3 protein in lung cancer patients. J Immunol. 2004; 172 (5): 3289–3296.
30. Kruit W.H., Suciu S., Dreno B., Chiarion-Sileni V., Mortier L., Robert C., Maio M., Brichard V.G., Lehmann F., Keilholz U. Immunization with recombinant MAGE-A3 protein combined with adjuvant systems AS15 or AS02B in patients with unresectable and progressive metastatic cutaneous melanoma: a randomized open-label phase II study of the EORTC Melanoma. J Clin Oncol. 2013 Jul 1; 31 (19): 2413–20. doi: 10.1200/JCO.2012.43.7111.
31. Davis I.D., Chen W., Jackson H., Parente P., Shackleton M., Hopkins W., Chen Q., Dimopoulos N., Luke T., Murphy R., Scott A.M., Maraskovsky E., McArthur G., MacGregor D., Sturrock S., Tai T.Y., Green S., Cuthbertson A., Maher D., Miloradovic L., Mitchell S.V., Ritter G., Jungbluth A.A., Chen Y.T., Gnjatic S., Hoffman E.W., Old L.J., Cebon J.S. Recombinant NY-ESO-1 protein with ISCOMATRIX adjuvant induces broad integrated antibody and CD4(+) and CD8(+) T cell responses in humans. Proc Natl Acad Sci USA. 2004; 101: 10697–10702.
32. Nicholaou T., Ebert L.M., Davis I.D., McArthur G.A., Jackson H., Dimopoulos N., Tan B., Maraskovsky E., Miloradovic L., Hopkins W., Pan L., Venhaus R., Hoffman E.W., Chen W., Cebon J. Regulatory T-cellmediated attenuation of T-cell responses to the NY-ESO-1 ISCOMATRIX vaccine in patients with advanced malignant melanoma. Clin. Cancer Res. 2009; 15; 2166–2173.
33. Morgan R.A., Chinnasamy N., Abate-Daga D., Gros A., Robbins P.F., Zheng Z., Dudley M.E., Feldman S.A., Yang J.C., Sherry R.M., Phan G.Q., Hughes M.S., Kammula U.S., Miller A.D., Hessman C.J., Stewart A.A., Restifo N.P., Quezado M.M., Alimchandani M., Rosenberg A.Z., Nath A., Wang T., Bielekova B., Wuest S.C., Akula N., McMahon F.J., Wilde S., Mosetter B., Schendel D.J., Laurencot C.M., Rosenberg S.A. Cancer regression and neurological toxicity following anti-MAGE-A3 TCR gene therapy. J Immunother. 2013; 36 (2): 133–151. doi: 10.1097/CJI.0b013e3182829903.
34. Dhodapkar M.V., Sznol M., Zhao B., Wang D., Carvajal R.D., Keohan M.L., Chuang E., Sanborn R.E., Lutzky J., Powderly J., Kluger H., Tejwani S., Green J., Ramakrishna V., Crocker A., Vitale L., Yellin M., Davis T., Keler T. Induction of antigen-specific immunity with a vaccine targeting NY-ESO-1 to the dendritic cell receptor DEC-205. Sci Transl Med. 2014; 6 (232): ra251. doi: 10.1126/scitranslmed.3008068.
35. Walter S., Weinschenk T., Stenzl A., Zdrojowy R., Pluzanska A., Szczylik C., Staehler M., Brugger W., Dietrich P.Y., Mendrzyk R., Hilf N., Schoor O., Fritsche J., Mahr A., Maurer D., Vass V., Trautwein C., Lewandrowski P., Flohr C., Pohla H., Stanczak J.J., Bronte V., Mandruzzato S., Biedermann T., Pawelec G., Derhovanessian E., Yamagishi H., Miki T., Hongo F., Takaha N., Hirakawa K., Tanaka H., Stevanovic S., Frisch J., Mayer-Mokler A., Kirner A., Rammensee H.G., Reinhardt C., Singh-Jasuja H. Multipeptide immune response to cancer vaccine IMA901 after single-dose cyclophosphamide associates with longer patient survival. Nat Med. 2012; 18 (8): 1254–1261. doi: 10.1038/nm.2883.
36. Alexandrov L.B., Nik-Zainal S., Wedge D.C., Aparicio S.A., Behjati S., Biankin A.V., Bignell G.R., Bolli N., Borg A., Børresen-Dale A.L., Boyault S., Burkhardt B., Butler A.P., Caldas C., Davies H.R., Desmedt C., Eils R., Eyfjörd J.E., Foekens J.A., Greaves M., Hosoda F., Hutter B., Ilicic T., Imbeaud S., Imielinski M., Jäger N., Jones D.T., Jones D., Knappskog S., Kool M., Lakhani S.R., López-Otín C., Martin S., Munshi N.C., Nakamura H., Northcott P.A., Pajic M., Papaemmanuil E., Paradiso A., Pearson J.V., Puente X.S., Raine K., Ramakrishna M., Richardson A.L., Richter J., Rosenstiel P., Schlesner M., Schumacher T.N., Span P.N., Teague J.W., Totoki Y., Tutt A.N., Valdés-Mas R., van Buuren M.M., van ‘t Veer L., Vincent-Salomon A., Waddell N., Yates L.R.; Australian Pancreatic Cancer Genome Initiative; ICGC Breast Cancer Consortium; ICGC MMML-Seq Consortium; ICGC PedBrain, Zucman-Rossi J., Futreal P.A., McDermott U., Lichter P., Meyerson M., Grimmond S.M., Siebert R., Campo E., Shibata T., Pfister S.M., Campbell P.J, Stratton M.R. Signatures of mutational processes in human cancer. Nature; 2013; 500: 415–421.
37. Takahashi N., Ohkuri T., Homma S., Ohtake J., Wakita D., Togashi Y., Kitamura H., Todo S., Nishimura T. First clinical trial of cancer vaccine therapy with artificially synthesized helper/killer-hybrid epitope long peptide of MAGE-A4 cancer antigen. Cancer Sci. 2012; 103 (1): 150–153. doi: 10.1111/j.1349-7006.2011.02106.x.
38. Водолажский Д.И., Меньшенина А.П., Двадненко К.В., Новикова И.А., Златник Е.Ю., Бахтин А.В., Моисеенко Т.И., Селютина О.Н., Франциянц Е.М. Опыт конструирования дендритно-клеточной вакцины для лечения рака шейки матки. Фундаментальные исследования. 2015; 1: 716–720.
39. Водолажский Д.И., Покудина И.О., Шкурат М.А., Мотевосян М.С., Меньшенина А.П., Двадненко К.В. Использование дендритных клеток в онкологии. Валеология. 2015; 1: 68–76.
40. Adair S.J., Hogan K.T. Treatment of ovarian cancer cell lines with 5-aza-20-deoxycytidine upregulates the expression of cancer-testis antigens and class I major histocompatibility complex-encoded molecules. Cancer Immunol Immunother. 2009; 58 (4): 589–601. doi: 10.1007/s00262-008-0582-6.
41. Morse M.A., Garst J., Osada T., Khan S., Hobeika A., Clay T.M., Valente N., Shreeniwas R., Sutton M.A., Delcayre A., Hsu D.H., Le Pecq J.B., Lyerly H.K. A phase I study of dexosome immunotherapy in patients with advanced nonsmall cell lung cancer. J. Transl. Med. 2005; 3 (1): 9.
42. Sadanaga N., Nagashima H., Mashino K., Tahara K., Yamaguchi H., Ohta M., Fujie T., Tanaka F., Inoue H., Takesako K., Akiyoshi T., Mori M. Dendritic cell vaccination with MAGE peptide is a novel therapeutic approach for gastrointestinal carcinomas. Clin. Cancer Res. 2001; 7: 2277–2284.
43. Rosenberg S.A. Cell transfer immunotherapy for metastatic solid cancer what clinicians need to know. Nat Rev Clin Oncol. 2011; 8 (10): 577–585.
44. Makin G., Hickman J.A. Apoptosis and cancer chemotherapy. Cell Tissue Res. 2000; 301 (1): 143–152.
45. Matsushita N., Aruga A., Inoue Y., Kotera Y., Takeda K., Yamamoto M. Phase I clinical trial of a peptide vaccine combined with tegafur-uracil plus leucovorin for treatment of advanced or recurrent colorectal cancer. Oncol Rep. 2013; 29 (3): 951–959. doi: 10.3892/or.2013.2231.
46. Sigalotti L., Coral S., Fratta E., Lamaj E., Danielli R., Di Giacomo A.M., Altomonte M., Maio M. Epigenetic modulation of solid tumors as a novel approach for cancer immunotherapy. Semin Oncol. 2005; 32: 473–478.
47. Adair S.J., Hogan K.T. Treatment of ovarian cancer cell lines with 5-aza-20-deoxycytidine upregulates the expression of cancer-testis antigens and class I major histocompatibility complex-encoded molecules. Cancer Immunol Immunother. 2009; 58 (4): 589–601. doi: 10.1007/s00262-008-0582-6.
48. Fonsatti E., Nicolay H.J., Sigalotti L., Calabro L., Pezzani L., Colizzi F., Altomonte M., Guidoboni M., Marincola F.M., Maio M. Functional up-regulation of human leukocyte antigen class I antigens expression by 5-aza-20-deoxycytidine in cutaneous melanoma: immunotherapeutic implications. Clin Cancer Res. 2007; 13: 3333–3338.
49. Goodyear O., Agathanggelou A., Novitzky-Basso I., Siddique S., McSkeane T., Ryan G., Vyas P., Cavenagh J., Stankovic T., Moss P., Craddock C. Induction of a CD8+ T-cell response to the MAGE cancer testis antigen by combined treatment with azacitidine and sodium valproate in patients with acute myeloid leukemia and myelodysplasia. Blood. 2010; 116: 1908–1918.
50. Toor A.A., Payne K.K., Chung H.M., Sabo R.T., Hazlett A.F., Kmieciak M., Sanford K., Williams D.C., Clark W.B., Roberts C.H., McCarty J.M., Manjili M.H. Epigenetic induction of adaptive immune response in multiple myeloma: sequential azacitidine and lenalidomide generate cancer testis antigen-specific cellular immunity. Br J Haematol. 2012; 158 (6): 700–711. doi: 10.1111/j.1365-2141.2012.09225.x.
51. Robbins P.F., Morgan R.A., Feldman S.A., Yang J.C., Sberry R.M., Dudley M.E., Wunderlicb J.R., Nabvi A.V., Helman L.J., Makall C.L., Kammula U.S., Hugbes M.S., Restifo N.P., Raffeld M., Lee C.C., Levy C.L., Li Y.F., El-Gamil M., Scbwarz S.L., Laurencot C., Rosenberdg S.A. Tumor regression in patients with metastatic synovial cell sarcoma and melanoma using genetically engineered lymphocytes reactive with NY-ESO-1. J Clin Oncol. 2011; 29 (7): 917–924. doi: 10.1200/JCO.2010.32.2537.
52. Linette G.P., Stadtmauer E.A., Maus M.V., Rapoport A.P., Levine B.L., Emery L., Litzky L., Bagg A., Carreno B.M., Cimino P.J., Binder-Scholl G.K., Smethurst D.P., Gerry A.B., Pumphrey N.J., Bennett A.D., Brewer J.E., Dukes J., Harper J., Tayton-Martin H.K., Jakobsen B.K., Hassan N.J., Kalos M., June C.H. Cardiovascular toxicity and titin cross-reactivity of affinity-enhanced T cells in myeloma and melanoma. Blood. 2013; 122 (6): 863–871. doi: 10.1182/blood-2013-03-490565.
53. Morgan R.A., Chinnasamy N., Abate-Daga D., Gros A., Robbins P.F., Zheng Z., Dudley M.E., Feldman S.A., Yang J.C., Sherry R.M., Phan G.Q., Hughes M.S., Kammula U.S., Miller A.D., Hessman C.J., Stewart A.A., Restifo N.P., Quezado M.M., Alimchandani M., Rosenberg A.Z., Nath A., Wang T., Bielekova B., Wuest S.C., Akula N., McMahon F.J., Wilde S., Mosetter B., Schendel D.J., Laurencot C.M., Rosenberg S.A. Cancer regression and neurological toxicity following anti-MAGE-A3 TCR gene therapy. J Immunother. 2013; 36 (2): 133–151. doi: 10.1097/CJI.0b013e3182829903.
54. Cruz C.R., Gerdemann U., Leen A.M., Shafer J.A., Ku S., Tzou B., Horton T.M., Sheehan A., Copeland A., Younes A., Rooney C.M., Heslop H.E., Bollard C.M. Improving T-cell therapy for relapsed EBV-negative Hodgkin lymphoma by targeting upregulated MAGE-A4. Clinical cancer research: an official journal of the American Association for Cancer Research. 2011; 17: 7058–7066.
55. Dudley J.C., Lin M.T., Le D.T., Esbliman J.R. Microsatellite instability as a biomarker for PD-1 blockade. Clin Caner Res. 2016; 22 (4): 813–820. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-15-1678.
56. Yuan J., Gnjatic S., Li H., Powel S., Gallardo H.F., Ritter E., Ku G.Y., Jungbluth A.A., Segal N.H., Rasalan T.S., Manukian G., Xu Y., Roman R.A., Terzulli S.L., Heywood M., Pogoriler E., Ritter G., Old L.J., Allison J.P., Wolchok J.D. CTLA-4 blockade enhances polyfunctional NY-ESO-1 specific T cell responses in metastatic melanoma patients with clinical benefit. Proc Natl Acad Sci USA. 2008; 105 (51): 20410-20415. doi: 10.1073/pnas.0810114105.
Для цитирования:
Водолажский Д.И., Кит О.И., Могушкова Х.А., Пушкин А.А., Тимошкина Н.Н. РАКОВЫЕ ТЕСТИКУЛЯРНЫЕ АНТИГЕНЫ В ИММУНОТЕРАПИИ ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫХ ОПУХОЛЕЙ. Сибирский онкологический журнал. 2017;16(2):71-81. https://doi.org/10.21294/1814-4861-2017-16-2-71-81
For citation:
Vodolazhsky D.I., Kit O.I., Mogushkova K.A., Pushkin A.A., Timoshkina N.N. CANCER TESTIS ANTIGENS IN CANCER IMMUNOTHERAPY. Siberian journal of oncology. 2017;16(2):71-81. (In Russ.) https://doi.org/10.21294/1814-4861-2017-16-2-71-81
Просмотров: 1003
.png)
Послать статью по эл. почте 
